КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 21-66-00012

НазваниеСоздание с использованием генетических технологий и изучение новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и диетической ценностью

РуководительХлесткина Елена Константиновна, Доктор биологических наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений имени Н. И. Вавилова", г Санкт-Петербург

Период выполнения при поддержке РНФ 2021 г. - 2024 г. 

Конкурс№56 - Конкурс 2021 года «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований по поручениям (указаниям) Президента Российской Федерации» (генетические исследования).

Область знания, основной код классификатора 06 - Сельскохозяйственные науки, 06-104 - Агробиотехнологии

Ключевые словаCRISPR/Cas, биологически активные компоненты, гены-мишени, диетическое питание, зернобобовые, зерновые, овощные, плодовые, продуктивность, редактированные линии, устойчивость

Код ГРНТИ62.37.29


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Выполнение предполагаемого проекта планируется в рамках научного приоритета Н2-1. «Разработка генетических технологий, применяемых в растениеводстве» Федеральной научно-технической программы развития генетических технологий на 2019-2027 годы. Реализация запланированных в проекте масштабных комплексных исследований на широком спектре культурных растений будут способствовать решению приоритетной задачи Н2-1-1. Получение новых линий растений с повышенной устойчивостью к болезням и вредителям, гербицидам, сложным климатическим условиям, обладающих улучшенной пищевой и технологической ценностью, увеличенным сроком хранения продукции. Актуальность проекта состоит в том, что он направлен на преодоление сразу нескольких ограничительных факторов (узкий спектр доступных генов-мишеней для улучшения генотипов путем редактирования, видо- и генотипспецифическая зависимость эффективности трансформации и регенерации, недостаточная изученность плейотропного действия нокаута многих генов), тормозящих широкое использование генетических технологий в растениеводстве. Проект охватывает более 10 культур (ячмень, кукуруза, чуфа, соя, горох, свекла, редис, арбуз, киви, виноград и др.) и предполагает получение модифицированных линий с улучшенным биохимическим составом семян, плодов или корнеплодов в ответ требованиям рынка диетического и функционального питания и в целом требованиям современной пищевой промышленности. Также осуществленные разработки позволят в дальнейшем рационально менять габитус растений, контролировать форму и размер плодов, увеличивать продуктивность, диверсифицировать сорта по срокам спелости в ответ на требования к конвейерному типу производства определенных культур и для повышения адаптации к неблагоприятным условиям среды. На основе разных подходов к расширению спектра редактируемых генотипов и преодолению генотип-специфической низкой эффективности трансформации и регенерации, будет предложена стратегия для доступного редактирования широкого набора сортов, в частности, для зерновых и зернобобовых культур. В проекте охватываются как новые в плане редактирования культуры, так и новые гены-мишени а также генотипы, впервые вовлекаемые в генно-инженерные исследования. Его успешное выполнение заложит фундамент для масштабирования подобных работ в объеме требований современной селекции.

Ожидаемые результаты
В результате реализации проекта впервые будет осуществлено масштабное исследование, комплексно нацеленное на решение ряда проблем, связанных с применением генетических технологий для развития современного растениеводства с охватом не менее 20 генов-мишеней не менее 10 различных растительных культур, охарактеризованы и предложены новые гены-мишени для внесения на основе механизма NHEJ (негомологичное воссоединение концов) как нокаутных мутаций, так и мутаций, восстанавливающих функции генов. В конечном счете, будет существенно расширено генетическое разнообразие исходного материала для новых ускоренных селекционных программ (включая создание сортов для диетического и функционального питания), заложен фундамент для масштабирования подобных работ в объеме требований современной селекции, подготовлены высоко квалифицированные кадры по направлению разработки и использования генетических технологий в растениеводстве, внесен весомый вклад в повышение престижа направлений "биология и биотехнология растений", "современная селекция растений".


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2021 году
Настоящий проект "Создание с использованием генетических технологий и изучение новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и диетической ценностью" напрямую отвечает ключевой задаче "Н2-1-1. Получение новых линий растений с повышенной устойчивостью к болезням и вредителям, гербицидам, сложным климатическим условиям, обладающих улучшенной пищевой и технологической ценностью, увеличенным сроком хранения продукции" в рамках раздела "Н2-1. Разработка генетических технологий, применяемых в растениеводстве" направления "Н2. Генетические технологии для развития сельского хозяйства". В работе проводится модификация зерновых, зернобобовых, овощных, бахчевых, плодовых и других культур, для того чтобы менять в заданную сторону биохимический состав семян, плодов или корнеплодов, отвечая требованиям рынка диетического и функционального питания и в целом требованиям современной пищевой промышленности; изменять габитус растений с целью снижения ресурсных затрат при производстве; контролировать форму и размер плодов; увеличивать продуктивность; влиять на скорость развития растений для диверсификации будущих сортов по срокам спелости в ответ на требования к конвейерному типу производства определенных культур и на повышение адаптации к неблагоприятным условиям среды. В отчетном году для выполнения проекта создана лаборатория «Центр генетических технологий ВИР». К настоящему моменту в работу уже вовлечены 12 объектов (однодольные ячмень, кукуруза и чуфа и двудольные свекла, редис, люцерна, горох, соя, вигна, актинидия (киви), виноград, арбуз). В рамках решения общей проблемы в сфере редактирования растений – генотип-специфической зависимости способности к соматическому эмбриогенезу, ограничивающей широкое внедрение технологий редактирования в практику, – за отчетный период получены транскриптомы каллусов эмбриогенной и неэмбриогенной линий M. truncatula, что позволит далее выявить гены, ингибирующие и стимулирующие процессы каллусообразования и соматического эмбриогенеза. В работах на ячмене отобраны индивидуальные растения с различными мутациями «gain-of-function» по гену Myc2 и получены трансформанты по гену Cle3, что является основой для верификации протоколов восстановления функции генов при помощи механизма NHEJ (впервые в мире), получены трансформанты гибридов F2 GP/PLP (генотип Ant2Ant2) для дальнейшего выделения нокаутных мутантов для уточнения функций и возможного плейотропного эффекта гена Ant2 и проведен комплексный сравнительный анализ ранее полученных нокаутных линий по гену Nud и Win1. Полученные результаты свидетельствуют об отсутствии негативного плейотропного эффекта, обусловленного мутацией в гене Nud, приводящей к голозерности, и предполагают, что данная мутация не снижает качества зерна и его питательной ценности. Нокаут гена Nud повышает устойчивость зерна к неблагоприятным абиотическим фактором до и во время прорастания. Проведенный транскриптомный анализ позволит впервые описать на молекулярно-генетическом уровне уникальный механизм пленчатости, выработанный эволюционно только у ячменя (яркий пример конвергентной эволюции). Показано, что ген Win1 не влияет на устойчивость к листовым грибным болезням и осмотическому стрессу, но снижает радиочувствительность растений. Выделены эффективные гаплоиндукторные линии для дальнейшего использования в создании редактированных гомозиготных линий и подобраны генотипы из коллекции кукурузы ВИР для дальнейшего редактирования по генам биосинтеза крахмала, созданы генетические конструкции для нокаута генов waxy endosperm (wx) и amylase extender (ae) у кукурузы. Впервые успешно введены в культуру in vitro образцы чуфы и выявлен ген CNR1 чуфы, что позволит в дальнешем создать нокаутные линии с целью повышения продуктивности. Идентифицирован полный набор генов семейств ANT и CNR у свеклы и редиса, проведен анализ динамики их экспрессии при развитии запасающего корня, в результате определены конкретные кандидаты на роль регуляторов роста запасающего корня. На основе проведенного биохимического и молекулярно-генетического анализа выбраны гены-мишени, участвующие в биосинтезе беталаинов, для продолжения работ по созданию новых линий нетрансгенной столовой свеклы, отвечающих требованиям современной пищевой промышленности. На бобовых растениях, во-первых, глубокий анализ систем генов участвующих в клубенокообразовании у люцерны и гороха позволил выделить мишени для дальнейшего улучшения симбиотической фиксации азота с целью повышения продуктивности этих культур, во-вторых, выбраны и изучены объекты редактирования и гены-мишени для повышения содержания амилозы у коммерческих сортов гороха овощного назначения, в третьих, для решения задачи по расширению ареалов возделывания сои и вигны и улучшения пригодности к механизированной уборки вигны сделано следующее: разработаны конструкции для нокаута генов Е4 сои и TFL1 вигны, выделен и секвенирован транскриптом контрастных образцов вигны для поиска новых селекционно значимых генов-мишеней для возделывания вигны спаржевой в Приморье. По плодовым и ягодным: у актинидии (киви) идентифицированы ключевые гены биосинтеза антоцианов, сконструированы праймеры для клонирования и ресеквенирования аллельных вариантов у отобранных образцов киви с хорошей регенерационной способностью; сформирована выборка образцов винограда, отличающихся по окраске кожуры и мякоти ягоды, а также сахарокислотному индексу, разработаны конструкции для редактирования генов MybA1 и IdnDH. С целью дальнейшего ускоренного создания при помощи редактирования сортов арбуза с заданной формой плода успешно введены в культуру in vitro отобранные образцы, контрастные по данному признаку. Таким образом, как и планировалось, в первый год работы получены значимые результаты по не менее чем 10 культурам не менее чем 16 генам-мишеням, значимые для создания с использованием генетических технологий новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и пищевой ценностью. Результаты отличаются высокой степенью новизны - в проекте охвачены как новые в плане редактирования культуры, так и новые гены-мишени а также генотипы, впервые вовлекаемые в генно-инженерные исследования. Проведенные работы закладывают фундамент для масштабирования подобных работ в объеме требований современной селекции.

 

Публикации

1. Разгонова М.П., Захаренко А.М., Гордеева Е.И., Шоева О.Ю., Антонова Е.В., Пикула К.С., Коваль Л.А., Хлесткина Е.К., Голохваст К.С. Phytochemical Analysis of Phenolics, Sterols, and Terpenes in Colored Wheat Grains by Liquid Chromatography with Tandem Mass Spectrometry Molecules, выпуск 26, онлайн номер статьи 5580 (год публикации - 2021) https://doi.org/10.3390/molecules26185580

2. Беспалова Е.С., Ершова К.М., Ухатова Ю.В. Регенерация сои в культуре in vitro (обзор). Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 2021;182(4):148-155 (год публикации - 2021) https://doi.org/10.30901/2227-8834-2021-4-148-155

3. Лебедева М.А., Mahboobeh А., Садикова Д.С., Лутова Л.А. At the root of nodule organogenesis: conserved regulatory pathways recruited by rhizobia Plants, Plants 2021, 10(12), 2654 (год публикации - 2021) https://doi.org/10.3390/plants10122654


Аннотация результатов, полученных в 2022 году
Настоящий проект "Создание с использованием генетических технологий и изучение новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и диетической ценностью" напрямую отвечает ключевой задаче "Н2-1-1. Получение новых линий растений с повышенной устойчивостью к болезням и вредителям, гербицидам, сложным климатическим условиям, обладающих улучшенной пищевой и технологической ценностью, увеличенным сроком хранения продукции" в рамках раздела "Н2- 1. Разработка генетических технологий, применяемых в растениеводстве" направления "Н2. Генетические технологии для развития сельского хозяйства". В работе проводится модификация зерновых, зернобобовых, овощных, бахчевых, плодовых и других культур, для того чтобы менять в заданную сторону биохимический состав семян, плодов или корнеплодов, отвечая требованиям рынка диетического и функционального питания и в целом требованиям современной пищевой промышленности; изменять габитус растений с целью снижения ресурсных затрат при производстве; контролировать форму и размер плодов; увеличивать продуктивность; влиять на скорость развития растений для диверсификации будущих сортов по срокам спелости в ответ на требования к конвейерному типу производства определенных культур и на повышение адаптации к неблагоприятным условиям среды. В рамках решения общей проблемы в сфере редактирования растений – генотип-специфической зависимости способности к соматическому эмбриогенезу, ограничивающей широкое внедрение технологий редактирования в практику, – за отчетный период на основе сравнительного транскриптомного анализа линии M. truncatula с разной эмбриогенностью создана база данных; с помощью полученной базы данных проведен поиск предполагаемых стимуляторов и репрессоров соматического эмбриогенеза, которые можно будет использовать в качестве морфогенетических регуляторов для оптимизации процессов трансформации и редактирования генома. В работах на ячмене в поколении Т3 выделено 10 гомозиготных нетрансгенных и 2 трансгенные линии ячменя с мутациями в гене Myc2. Анализ фенотипа (по окраске зерновки) показал смещение спектра в направлении фиолетовой и синей окраски в сравнении с неокрашенным зерном. Анализ мутантов Т1 по гену Cle3 выявил три растения с фиолетовой окраской оболочек зерна, которые далее по мере созревания растения приобретали черный цвет. Получены нетрансгенные растения Т2 с разнообразными гомозиготными мутациями в гене Ant2, фенотипическая оценка показала роль данного гена в накоплении антоцианов. Сравнения транскриптомов ранее полученных редактированных линий по генам Nud и Win1 выявило наиболее стабильные гены метаболизма липидов (вовлеченные в формирование, соответственно, пленчатого фенотипа и формирование кутикулярного воска), которые были выделены как будущие гены-кандидаты для исследования функции путем нокаута. Полученные сравнительные данные анализа линий ячменя, нокаутных по генам Nud и Win1 на холодоустойчивость, устойчивость к засолению и к токсическому действию ионов тяжелых металлов позволили обосновать комплекс физиологических параметров, характеризующих чувствительность/устойчивость нокаутных линий к разным стрессовым факторам, а также прогнозировать устойчивость нокаутных линий по гену Nud и Win1 к этим факторам на поздних этапах развития растений. В экспериментах на других однодольных растениях осуществлена трансфекция протопластов гаплоиндукторных линии кукурузы генетическими конструкциями для нокаута генов waxy endosperm (wx) и amylase extender (ae) (по отдельности и мультиплексный вариант) и трансфекция протопластов чуфы (Cyperus esculentus), созданы конструкции для дальнейшей трансформации с помощью агробактерий. Кроме того, впервые секвенирован и собран геном чуфы. Наличие последовательностей генома чуфы позволят ускорить поиск мишеней для изучения генетических аспектов роста и развития растений данной культуры. В части работы по свекле созданы конструкции для сверхэспрессии выявленных генов-кандидатов семейств ANT - BvANT1 и BvANT2 свеклы, проведена трансформация проростков свеклы штаммами Agrobacterium rhizogenes, несущими полученные конструкции, с целью создания композитных растений, сверхэкспрессирующих в корнях гены BvANT1 и BvANT2 - кандидаты на роль регуляторов роста запасающего корня. Разработан дизайн конструкций для редактирования гена BvDODA1, участвующего в биосинтезе бетанинов свеклы для продолжения работ по созданию новых линий нетрансгенной столовой свеклы, отвечающих требованиям современной пищевой промышленности. В части работы с растениями семейства бобовых на основе транскриптомного анализа корней гороха со сверхэкспрессией гена PsCLE13, получены данные по экспрессии генов, являющихся потенциальными корневыми мишенями системы авторегуляции клубенькообразования у бобовых растений, и изучена их возможная роли в контроле численности симбиотических клубеньков. Важно отметить, что среди генов с повышенной экспрессией в корнях были выявлены два гена – гомолога генов TOO MUCH LOVE (TML) люцерны, кодирующие F-box-белки – негативные регуляторы симбиоза. При этом в исследовании на люцерне выявлен системный характер регуляции экспрессии генов TML1 и TML2 с участием MtCLE35. Данные результаты представляют ценность для дальнейшего улучшения симбиотической фиксации азота с целью повышения продуктивности этих культур. На основе молекулярно-генетического анализа генов, участвующих в биосинтезе крахмала гороха, сконструирована нРНК для нокаута генов SBEI и SBEII с целью повышения содержания амилозы у коммерческих сортов гороха овощного назначения. Для продолжения работ, направленных в конечном счете на расширение ареалов возделывания сои и вигны и улучшения пригодности к механизированной уборке вигны осуществлена трансформация вигны и сои конструкциями для нокаута генов TFL1 и E4, соответственно; верифицированы выделившиеся ДЭГ (дифференциально экспрессирующиеся гены) по результатам проведенного ранее сравнительного транскриптомного анализа образцов вигны, контрастных по типу роста стебля в условиях повышенной влажности; среди ДЭГ определен перечень новых генов-кандидатов для дальнейшего редактирования вигны. По плодовым и ягодным: для дальнейшего редактирования образцов киви (для изменения окраски мякоти плодов) и винограда (с целью изменения окраски кожуры и мякоти ягоды, а также изменения сахарокислотного индекса) разработана серия конструкций для редактирования генов MybA1 и IdnDH с учетом аллельных отличий у сортов, которые ранее были отобраны для редактирования по хорошей регенерационной способности. С целью дальнейшего ускоренного создания при помощи редактирования сортов арбуза с заданной формой плода секвенированы и охарактеризованы аллели гена О (ClFS1) у форм арбуза с наиболее эффективной регенерацией, сконструирована нРНК для редактирования гена О. Таким образом, получены значимые результаты по не менее чем 10 культурам не менее чем 16 генам-мишеням, значимые для создания с использованием генетических технологий новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и пищевой ценностью. Результаты отличаются высокой степенью новизны - в проекте охвачены как новые в плане редактирования культуры, так и новые гены-мишени а также генотипы, впервые вовлекаемые в генно-инженерные исследования. Проведенные работы закладывают фундамент для масштабирования подобных работ в объеме требований современной селекции.

 

Публикации

1. Антонова Е. В., Шималина Н. С., Короткова А. М., Колосовская Е. В., Герасимова С. В. и Хлесткина Е. К. Seedling biometry of the nud knockout and win1 knockout barley lines under ionizing radiation Plants, 2022. Vol. 11(19). 2474 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/plants11192474

2. Гордеева, Е.; Шоева, О.; Мурсалимов, С.; Адонина, И.; Хлесткина, Е. Fine points of marker-assisted pyramiding of anthocyanin biosynthesis regulatory genes for the creation of black-grained bread wheat (Triticum aestivum L.) lines Agronomy, 2022, 12, 2934 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/agronomy12122934

3. Додуева И.Е., Лебедева М.А., Лутова Л.А. Фитопатогены и молекулярная мимикрия Генетика, 2022, т. 58, №6, с. 642-660 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.31857/S0016675822060030

4. Лебедева М.А.; Садикова Д.С.; Добычкина Д.А.; Жуков В.А.; Лутова Л.А. CLAVATA3/EMBRYO surrounding region genes involved in symbiotic nodulation in Pisum sativum Agronomy, 2022, 12, 2840 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/agronomy12112840

5. Соколова, Д.В.; Швачко, Н.А.; Михайлова, А.С.; Попов, В.С. Betalain content and morphological characteristics of table beet accessions: their interplay with abiotic factors Agronomy, Agronomy 2022 , 12 (5), 1033; https://doi.org/10.3390/agronomy12051033 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/agronomy12051033

6. Стрыгина, К.; Хлесткина, Е. Flavonoid Biosynthesis Genes in Triticum aestivum L.: Methylation patterns in cis-regulatory regions of the duplicated CHI and F3H genes Biomolecules, 2022, 12, 689 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/biom12050689

7. - ИССЛЕДОВАНИЕ УЧЕНЫХ ВИР: КОГДА СВЕКЛА КРАСНЕЕ И КАКАЯ? Портал Научная Россия, 14.09.2022 Информация взята с портала «Научная Россия» (https://scientificrussia.ru/) (год публикации - )

8. - Под редакцией генетиков. Ученые улучшают качество сельскохозяйственных растений Газета Поиск, 11.11.2022 №45-46 стр.8-9 (год публикации - )


Аннотация результатов, полученных в 2023 году
Настоящий проект "Создание с использованием генетических технологий и изучение новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и диетической ценностью" напрямую отвечает ключевой задаче "Н2-1-1. Получение новых линий растений с повышенной устойчивостью к болезням и вредителям, гербицидам, сложным климатическим условиям, обладающих улучшенной пищевой и технологической ценностью, увеличенным сроком хранения продукции" в рамках раздела "Н2- 1. Разработка генетических технологий, применяемых в растениеводстве" направления "Н2. Генетические технологии для развития сельского хозяйства". В работе проводится модификация зерновых, зернобобовых, овощных, бахчевых, плодовых и других культур, для того чтобы менять в заданную сторону биохимический состав семян, плодов или корнеплодов, отвечая требованиям рынка диетического и функционального питания и в целом требованиям современной пищевой промышленности; изменять габитус растений с целью снижения ресурсных затрат при производстве; контролировать форму и размер плодов; увеличивать продуктивность; влиять на скорость развития растений для диверсификации будущих сортов по срокам спелости в ответ на требования к конвейерному типу производства определенных культур и на повышение адаптации к неблагоприятным условиям среды. В рамках решения общей проблемы в сфере редактирования растений – генотип-специфической зависимости способности к соматическому эмбриогенезу, ограничивающей широкое внедрение технологий редактирования в практику, – за отчетный период на основе созданных конструкций для нокаута стимуляторов и репрессоров соматического эмбриогенеза были проведены трансформации эмбриогенной и неэмбриогенной линий M. truncatula, соответственно. Дальнейшая проверка создаваемых мутантов поможет валидировать факторы, которые можно будет использовать в качестве морфогенетических регуляторов для оптимизации процессов трансформации и редактирования генома. В работах на ячмене получены новые знания о молекулярно-генетических механизмах формирования признаков антоциановой окраски у злаков и впервые доказано, что редактирование на основе механизма NHEJ (non-homologous end joining) можно применять не только для нокаута генов, но и, наоборот, для восстановления функции генов (в том случае, если ранее эта функция была ранее нарушена естественной мутацией по типу сдвига рамки считывания). В экспериментах на других однодольных растениях (чуфа и гаплоиндукторные линии кукурузы) после апробации широкого спектра методов доставки редактирующих конструкций предложены наиболее перспективные подходы для работы с этими объектами. В части работы на корнеплодах (свекла, редис) показано, что созданные трансформанты со сверхэспрессией генов ANT имеют повышенные уровни экспрессии ряда генов-регуляторов активности камбия и развития запасающего корня. Для свеклы в рамках редактирования генов синтеза беталаинов получены трансформанты с таргетами для нокаута BvDODA. Подтвержденная роль генов ANT и BvDODA1 позволят рассматривать их далее как ключевые мишени для управления товарными качествами. В части работы с растениями семейства бобовых получены трансгенные корни гороха с событиями редактирования в генах PsCLE12 и PsCLE13 (для изменения клубенькообразования), и растения вигны с измененным типом роста стебля, а также трансформанты гороха и сои с редактирующими конструкциями генов биосинтеза крахмала и сроков созревания, соответственно. По плодовым и ягодным: для дальнейшего редактирования образцов киви (для изменения окраски мякоти плодов) и винограда (с целью изменения окраски кожуры и мякоти ягоды, а также изменения сахарокислотного индекса) проверены ранее разработанные конструкции для редактирования генов Myb и IdnDH. Для редактирования арбуза по гену О с целью управления формой плода арбуза осуществлена разработка векторной конструкции на основе плазмиды pKSE401. Таким образом, получены значимые результаты по не менее чем 10 культурам не менее чем 16 генам-мишеням, значимые для создания с использованием генетических технологий новых линий растений, адаптированных к меняющимся условиям окружающей среды, обладающих повышенной продуктивностью и пищевой ценностью. Результаты отличаются высокой степенью новизны - в проекте охвачены как новые в плане редактирования культуры, так и новые гены-мишени а также генотипы, впервые вовлекаемые в генно-инженерные исследования. Проведенные работы закладывают фундамент для масштабирования подобных работ в объеме требований современной селекции.

 

Публикации

1. Gerasimova S.V.; Kolosovskaya E.V.; Vikhorev A.V.; Korotkova A.M.; Hertig C.W.; Genaev M.A.; Domrachev D.V.; Morozov S.V.; Chernyak E.I.; Shmakov N.A.; G.V. Vasiliev, A.V. Kochetov, J. Kumlehn, E.K. Khlestkina WAX INDUCER 1 Regulates β-Diketone Biosynthesis by Mediating Expression of the Cer-cqu Gene Cluster in Barley International Journal of Molecular Sciences, 24(7):6762 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3390/ijms24076762

2. Khatefov EB, Goldstein VG, Krivandin AV, Wasserman LA. Main Characteristics of Processed Grain Starch Products and Physicochemical Features of the Starches from Maize (Zea mays L.) with Different Genotypes Polymers, 15(8):1976 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3390/polym15081976

3. Kudriashov A.A.; Zlydneva N.S.; Efremova E.P.; Tvorogova V.E.; Lutova L.A MtCLE08, MtCLE16, and MtCLE18 Transcription Patterns and Their Possible Functions in the Embryogenic Calli of Medicago truncatula Plants, 12(3):435 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3390/plants12030435

4. M.A. Lebedeva, D.A. Dobychkina, Ya.S. Yashenkova, D.A. Romanyuk, L.A. Lutova Local and systemic targets of the MtCLE35-SUNN pathway in the roots of Medicago truncatula Journal of Plant Physiology, Volume 281, 2023, 153922 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1016/j.jplph.2023.153922

5. Rozanova I.V.; Grigoriev Y.N.; Efimov V.M.; Igoshin A.V.; Khlestkina E.K. Genetic Dissection of Spike Productivity Traits in the Siberian Collection of Spring Barley Biomolecules, 13(6):909 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3390/biom13060909

6. А. С. Михайлова, Д. В. Соколова, Н. А. Швачко, В. С. Попов, Е. К. Хлесткина Аллельные различия ключевых генов биосинтеза беталаинов у контрастных по окраске корнеплода образцов свеклы столовой коллекции ВИР. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, - (год публикации - 2024)

7. М. М. Агаханов, Л.В. Багмет, Н.Г. Тихонова, М.В. Ерастенкова, Е.Н. Кислин, Ю.В. Ухатова, Е.К. Хлесткина Коллекция ВИР и гербарий ВИР (WIR) для сохранения, расширения и использования генетического разнообразия винограда Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, - (год публикации - 2024)

8. Ю. В. Ухатова, М. В. Ерастенкова, Е. С. Коршикова, Е. А. Крылова, А. С. Михайлова, Т. В. Семилет, Н. Г. Тихонова, Н. А. Швачко, Е. К. Хлесткина Улучшение культурных растений при помощи системы CRISPR/Cas: новые гены-мишени Молекулярная биология, том 57, № 3, с. 387–410 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.31857/S0026898423030151

9. - Ученые смогли изменять свойства и размер гранул крахмала в растениях кукурузы с помощью генов wx, ае и su Газета Поиск, Портал Poisknews.ru, 05.09.2023 (год публикации - )