КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 16-14-00052

НазваниеРасшифровка молекулярного механизма биолюминесценции высших грибов и разработка методических основ ее использования с целью создания новой патентно чистой линии аналитических методов для биотехнологии и медицины

РуководительГительзон Иосиф Исаевич, Доктор медицинских наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук", Красноярский край

Период выполнения при поддержке РНФ 2019 г. - 2020 г. 

Конкурс Конкурс на продление сроков выполнения проектов, поддержанных грантами Российского научного фонда по приоритетному направлению деятельности Российского научного фонда «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований по приоритетным тематическим направлениям исследований» (11).

Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-209 - Биотехнология (в том числе бионанотехнология)

Ключевые словабиолюминесценция, грибы, биотехнология, тест-системы, люцифераза, светящиеся грибы, Neonothopanus nambi, люциферин, люцифераза, люминесцентная система

Код ГРНТИ62.00.00


СтатусУспешно завершен


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Биолюминесцентные методы исследования очень разнообразны и применяются in vitro и in vivo для анализа метаболитов, в иммунологических исследованиях, изучения экспрессии генов и экологическом мониторинге. Биолюминесценция нашла широкое применение в медицине для изучения таких болезней, как диабет, онкологические, инфекционные и нейродегенеративные заболевания (Magalhães C.M., Esteves da Silva J.C., Pinto da Silva L. (2016) Chemiluminescence and Bioluminescence as an Excitation Source in the Photodynamic Therapy of Cancer: A Critical Review Chemphyschem. 7(15):2286-94), а также для скрининга лекарственных препаратов (Kelkar M., De A. (2012) Bioluminescence based in vivo screening technologies. Curr Opin Pharmacol. 12(5):592-600), для биоимиджинга живых систем в режиме реального времени (полученные биолюминесцентные трансгенные животные в дальнейшем применяются в доклинических исследованиях (Coleman S., and McGregor A. (2015) A bright future for bioluminescent imaging in viral research. Future Virol. ; 10(2): 169–183)), также биоимиджинг широко используется для исследования белок-белковых взаимодействий. Поскольку различные классы люцифераз принципиально отличаются друг от друга по структуре белка и субстратной специфичности, их большее разнообразие позволит увеличить и методический спектр применения в фундаментальных и прикладных целях . Найденная нашей лабораторией в рамках проекта РНФ люцифераза гриба Neonothapanus nambi принадлежит к принципиально новому семейству белков, не имеющих гомологии с какими-либо описанными ранее белками. Нами была показана биолюминесцентная активность этой люциферазы при гетерологической экспрессии гена в клетках Pichia pastoris и млекопитающих. В рамках настоящего проекта мы планируем несколько задач, имеющих как фундаментальное значение, так и практическое применение. Нами будут получены линии клеток млекопитающих, стабильно экспрессирующие люциферазу гриба Neonothapanus nambi. Такие линии клеток успешно применяются в доклинических исследованиях противоопухолевой терапии (De A., Loening A.M., S.S. (2007) An Improved Bioluminescence Resonance Energy Transfer Strategy for Imaging Intracellular Events in Single Cells and Living Subjects. Cancer Res. Aug 1; 67(15): 7175–7183). Так как люцифераза грибов является мембранным белком, в процессе работы будут изучены различные среды, имитирующие мембранное окружение, в которых белок имеет нативные структуру и активность, но при этом которые отлично подходят для структурных и биофизических методов исследования. Для увеличения яркости люциферазы при таких исследованиях будет проведен мутагенез гена люциферазы, включающий модификацию N-концевого участка. Для оценки люминесцентной активности полученных мутантов, а также для детекции люциферазы в денатурированном и неактивном состоянии нами предполагается получить антитела к этому белку, что в значительной мере расширит области применения этой люциферазы и возможности постановки различных контролей. Кроме того, планируется провести масштабный подбор условий для кристаллизации люциферазы. Кристаллизация мембранных белков сопряжена со значительными трудностями (Parker J.L., Newstead S. (2016) Membrane Protein Crystallisation: Current Trends and Future Perspectives. Adv Exp Med Biol.; 922: 61–72), поскольку необходима их солюбилизация при одновременном сохранении нативной структуры и стабильности. На данный момент разрешена структура чуть более 600 мембранных белков, из более, чем 50000 известных белков, ассоциированных с мембранами. Информация, полученная при кристаллизации каждого нового мембранного белка, позволяет улучшить точность алгоритмов предсказания подобных структур и аналогичных белковых доменов.

Ожидаемые результаты
За время реализации проекта нами планируется провести модификацию гена люциферазы для увеличения ее люминесцентной активности и стабильности в водных средах. В частности, мы обратим пристальное внимание на N-конец данного белка, поскольку по биоинформатическим предсказаниям именно там расположены аминокислотные остатки, участвующие во взаимодействии люциферазы с мембраной. Возможно, модификации N-концевого участка смогут повлиять на растворимость данного белка, а также на его яркость и стабильность его структуры. В ходе проекта мы планируем с помощью методик мутагенеза создать модифицированные варианты гена люциферазы грибов, а также разработать методику высокопроизводительного скрининга мутантов с нужными свойствами. В настоящее время уровень люминесценции люциферазы грибов в гетерологической системе культуры клеток млекопитающих сопоставим с уровнем люминесценции часто используемой в биоимиджинге люциферазы светлячка (Proc Natl Acad Sci U S A. 2018 115(50):12728-12732. Genetically encodable bioluminescent system from fungi. Kotlobay AA, Sarkisyan KS, Mokrushina YA, Marcet-Houben M, Serebrovskaya EO, Markina NM, Gonzalez Somermeyer L, Gorokhovatsky AY, Vvedensky A, Purtov KV, Petushkov VN, Rodionova NS, Chepurnyh TV, Fakhranurova LI, Guglya EB, Ziganshin R, Tsarkova AS, Kaskova ZM, Shender V, Abakumov M, Abakumova TO, Povolotskaya IS, Eroshkin FM, Zaraisky AG, Mishin AS, Dolgov SV, Mitiouchkina TY, Kopantzev EP, Waldenmaier HE, Oliveira AG, Oba Y, Barsova E, Bogdanova EA, Gabaldón T, Stevani CV, Lukyanov S, Smirnov IV, Gitelson JI, Kondrashov FA, Yampolsky IV.). В случае создания более яркого варианта люциферазы грибов, возрастет количество возможных методов ее применения, в том числе и в сочетании с другими известными люциферазами. В настоящее время методы, основанные на люциферин-люциферазной реакции, крайне популярны среди биологических и медицинских исследований по всему миру (J Immunol Methods. 2017 447:1-13. A bioluminescent caspase-1 activity assay rapidly monitors inflammasome activation in cells. O'Brien M, Moehring D, Muñoz-Planillo R, Núñez G, Callaway J, Ting J, Scurria M, Ugo T, Bernad L, Cali J, Lazar D.; Amino Acids. 2016 48(5):1151-60. Novel bioluminescent binding assays for interaction studies of protein/peptide hormones with their receptors. Liu YL, Guo ZY.; Biochemistry. 2017 56(39):5178-5184. Bioluminescent Probes for Imaging Biology beyond the Culture Dish. Rathbun CM, Prescher JA.), поэтому наличие яркого варианта люциферазы грибов, специфично связывающегося лишь со своим субстратом, позволит расширить круг методик биоимиджинга, а в ряде случаев увеличить чувствительность и область применения данных методов. В ходе работ над проектом нами будет создана коллекция векторов для создания лентивирусных частиц для трансдукции культур клеток млекопитающих, коллекция соответствующих вирусных частиц, а также коллекция культур клеток млекопитающих, стабильно экспрессирующих ген люциферазы грибов дикого типа или его модифицированных вариантов (например, слитый с флуоресцентным белков для улучшения визуализации и возможностей проведения микроскопических исследований или ген, кодирующий модификации N-конца для увеличения яркости продукта). Для решения практических задач, связанных с детекцией люциферазы и определения ее удельной активности, нами будут получены антитела к люциферазе. Полученные антитела будут использованы для проведения вестер-блот гибридизаций и гисто-химических реакций культур клеток млекопитающих, трансформированных геном люциферазы. С использованием в том числе мутантов с улучшенными характеристиками нами будет продолжен скрининг условий для кристаллизации люциферазы, что в дальнейшем позволит установить активный центр и механизм реакции ферментативного окисления люциферина грибов, предположения о котором выдвигались ранее (Kaskova Z.M. et al (2017) Mechanism and color modulation of fungal bioluminescence.Science Advances, Vol. 3, no. 4, e1602847). Таким образом, поставленные в проекте задачи - установление строения новой люциферазы высших грибов и разработка методов ее биомедицинского применения соответствуют тематике передовых мировых исследований в данной области. Успешная реализация поставленных задач позволит значительно усовершенствовать эргономичность имеющихся в медицине методов диагностики и мониторинга распространенных опасных заболеваний.


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2019 году
В рамках работы по проекту в течение 2019 года наша научная группа разработала подходы к улучшению последовательности люциферазы грибов, осуществила проверку функциональной важности ряда аминокислот, а так же получила антитела для иммуноферментной детекции люциферазы. Кроме того, был осуществлен первичный подбор условий для кристаллизации этого фермента. Для реализации первого направления мы использовали два альтернативных подхода: во-первых, экранировали гидрофобный и потенциально мембранно-связанный N-концевой участок белка с помощью дополнительных аминокислотных последовательностей, а во-вторых, с помощью случайного мутагенеза кодирующей последовательности люциферазы. Оба этих подхода оказались продуктивными и позволили нам выбрать две мутантные формы люциферазы грибов (одна с модификацией белка на N-конце, вторая - с точечной аминокислотной заменой) для дальнейшей работы с ними. Для второго направления мы использовали точечный мутагенез: в каждом случае один из предположительно важных для функции фермента аминокислотных остатков заменялся на аланиновый остаток. Полная потеря мутантами люминесцентных свойств позволила подтвердить необходимость аминокислот, расположенных в этих положениях, для функционирования белка. В рамках третьего направления мы получили значительное количество препарата очищенной люциферазы N. nambi из экспрессионного штамма P. pastoris. К этому белку были получены иммунные сыворотки крови. Методом дот-гибридизации была показана их высокая аффинность к люциферазе N. nambi. Кроме того, нам удалось показать, что данные сыворотки также аффинны к люциферазам других люминесцентных высших грибов, что делает их пригодными для детекции и этих белков. Антитела значительно расширяют арсенал средств для исследования грибных люцифераз, так как обеспечивают чувствительную детекцию различных белковых конструкций люцифераз без необходимости вводить дополнительные аминокислотные остатки для детекции. Нами был выполнен подбор оптимальных условий для люминесцентной активности люциферазы, в том числе подобраны буфер и детергент, позволяющие детектировать ее максимальное значение. Было показано, что при оптимальных условиях для люминесцентной активности люцифераза не является термостабильной уже при комнатной температуре, что может быть препятствием для кристаллизации. Дальше наша работа двигалась в направлении подбора условий увеличения температурной стабильности nnLuz. Как было показано при повышении температуры ее устойчивость возрастает при нейтральных значения рН и повышенной концентрации NaCl. Методом дифференциальной сканирующей флюориметрии был осуществлён масштабный скрининг детергентов с целью дальнейшего увеличения термостабильности люциферазы. При использовании некоторых детергентов (например, LysoFos 10) нам удалось увеличить термостабильность люциферазы на 7 градусов, по сравнению с DDM, первоначально использовавшимся для солюбилизации.

 

Публикации

1. Котлобай А.А, Дубинный М.А, Пуртов К.В., Гугля Е.Б., Петушков В.Н., Родионова Н.С, Болт Я.В, Каськова З.М., Ямпольский И.В, Царькова А.С ... Bioluminescence chemistry of fireworm Odontosyllis Proceedings of the National Academy of Sciences, no. 38, vol. 116, 18911–18916 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1073/pnas.1902095116


Аннотация результатов, полученных в 2020 году
Ранее нашим коллективом была описана люцифераза грибов Neonothopanus nambi, принципиально отличающаяся от других известных люцифераз как по структуре, так и по биохимическим свойствам. Мы показали биолюминесцентную активность люциферазы грибов при гетерологической экспрессии гена в клетках Pichia pastoris и млекопитающих. В процессе первого года работы над проектом мы разработали подходы к улучшению последовательности люциферазы грибов, проверили функциональную важность ряда аминокислот, а также получили антитела для иммуноферментной детекции люциферазы. Кроме того, был осуществлен первичный подбор условий для кристаллизации этого фермента. В процессе второго года работы над проектом мы показали, что модификация N-конца люциферазы грибов не повысила интенсивность испускаемой в реакции окисления люциферина люминесценции и не улучшила стабильность фермента. Сравнение люциферазы грибов N. nambi дикого типа и одной из самых широко используемых люцифераз — люциферазы светляка Photinus pyralis — показало, что при проведении люминесцентной реакции в оптимальных для каждой люциферазы условиях люцифераза светляка демонстрировала в 100 раз более яркий сигнал, однако при проведении реакции в буфере DPBS (условия, приближенные к внутриорганизменным и внутриклеточным) уровень сигнала от обеих люцифераз был сопоставим, а яркость люциферазы светляка была выше всего на 30-60%. Нам удалось получить культуру опухолевых клеток CT26, стабильно экспрессирующих ген люциферазы грибов дикого типа. Стабильная экспрессия этого гена позволила увеличить выход испускаемой клетками люминесценции в 100 раз в сравнении с временной экспрессией гена люциферазы в клетках CT26. Инъекция полученных опухолевых клеток CT26, стабильно экспрессирующих ген люциферазы грибов дикого типа, позволила успешно развить опухоль в мыши, а также провести визуализацию испускаемой опухолью люминесценции. Получение аффинно-очищенных антител к люциферазе грибов и подбор методик гистохимической окраски и вестерн-блот-гибридизации с этими антителами позволили показать кросс-реактивность с люциферазами других высших грибов. Для подбора условий для кристаллизации белка было получено 20 мг высокоочищенного препарата люциферазы и разработан стабилизирующий активность люциферазы буфер. Были использованы несколько подходов для попытки кристаллизации фермента, однако в результате эксперимента нам не удалось обнаружить кристаллы/микрокристаллы, пригодные для рентгеноструктурного анализа с использованием синхротронного источника излучения.

 

Публикации

1. Береговая К. А., Мышкина Н. М., Чепурных Т. В.,Котлобай А. А. , Пуртов К. В. , Петушков В. Н., Родионова Н. С., Ямпольский И. В. Рациональный дизайн и мутагенез люциферазы гриба Neonothopanus nambi Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, - (год публикации - 2021) https://doi.org/10.31857/S2686738921010054

2. Гороховатский А. Ю. , Чепурных Т. В., Щеглов А. С., Мокрушина Ю. А., Баранова М. Н., Гончарук С. А., Пуртов К. В. ,Петушков В. Н. , Родионова Н. С., Ямпольский И. В. Рекомбинантная люцифераза гриба Neonothopanus nambi: получение и свойства Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, - (год публикации - 2021) https://doi.org/10.31857/S2686738921010091

3. Митюшкина Т.Ю., Мишин А.С., Маркина Н.М., Чепурных Т.В., Гугля Е.Б., Каратаева Т.А., Царькова А.С., Ямпольский И.В., Саркисян К.С, ... Plants with genetically encoded autoluminescence Nature Biotechnology, Том: 38 Выпуск: 8 Стр.: 1001-1001 (год публикации - 2020) https://doi.org/10.1038/s41587-020-0500-9

4. Гороховатский А.Ю., Чепурных Т.В., Шахова Е.С., Соловьев В.Д., Пуртов К.В., Ямпольский И.В. Purification, applications and cross-reactivity of polyclonal antibodies to fungal luciferase BIOTECHNOLOGY & BIOTECHNOLOGICAL EQUIPMENT, - (год публикации - 2021)

5. Пуртов К.В., Гороховатский А.Ю., Чепурных Т.В., Мокрушина Ю.А., Баранова М.Н., Гончарук С.А., Ямпольский И.В. Properties of fungal luciferase purified after expression in Pichia pastoris cells BIOTECHNOLOGY & BIOTECHNOLOGICAL EQUIPMENT, - (год публикации - 2021)


Возможность практического использования результатов
не указано