КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 20-73-00102

НазваниеИсследование влияния мембранных макромолекул внеклеточных нановезикул на их поверхностную активность и адсорбцию к границам раздела фаз

РуководительЧернышёв Василий Сергеевич, кандидат наук (признаваемый в РФ PhD)

Организация финансирования, регион Автономная некоммерческая образовательная организация высшего образования «Сколковский институт науки и технологий», г Москва

Период выполнения при поддержке РНФ 07.2020 - 06.2022 

Конкурс№49 - Конкурс 2020 года «Проведение инициативных исследований молодыми учеными» Президентской программы исследовательских проектов, реализуемых ведущими учеными, в том числе молодыми учеными.

Область знания, основной код классификатора 03 - Химия и науки о материалах, 03-406 - Химическая термодинамика. Физическая химия поверхности и межфазных границ. Адсорбция

Ключевые словаповерхнастная активность нановезикул, адсорбция, термодинамика, внеклеточные нановезикулы, диффузия, поверхностное натяжение

Код ГРНТИ31.15.25


СтатусУспешно завершен


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Предлагаемый проект направлен на создание основы для развития новых высокочувствительных и высокоинформативных физико-химических методов медицинской диагностики, а также для разработки новых носителей лекарственных препаратов. Диагностика и лечение заболевания на ранней стадии напрямую связана с повышением вероятности благополучной борьбы с болезнью. Однако, на сегодняшний день, все еще существуют препятствия достичь этого уровня во многих типах заболеваний, особенно в сфере онкологии. Оценка молекулярных сигнатур опухоли в образцах биожидкостей, известная как «жидкая биопсия», является одним из наиболее перспективных направлений в ранней точной тераностике рака, благодаря непосредственно объекту исследования – крови и возможности быстрого многократного анализа микрообъемов образцов для мониторинга молекулярных изменений опухолевого процесса в реальном времени. Эти молекулярные сигнатуры также могут позволить локально доставлять нужный лекарственный препарат. Секретируемые клетками нано-размерные (20-200 нм) внеклеточные везикулы (экзосомы), циркулирующие в биологических жидкостях организма, в последние годы признаны наиболее многообещающими объектами-биомаркерами естественно-аккумулирующими в себе уникальные молекулярные сигнатуры или матрицы распознавания, особенно такие как мембранные белки, специфически свидетельствующие о динамике (включая метастазирование) опухолевого процесса. Помимо распознавания сигнатур заболевания, внеклеточные нановезикулы также могут быть использованы как носитель лекарственных препаратов. Несмотря на высокий клинико-диагностический и лечебный потенциал внеклеточных нановезикул, отсутствие данных об их поверхностной активности в присутствии границ раздела газ-жидкость, жидкость-жидкость и жидкость-твердое тело, которые регулярно встречаются при разработке диагностических платформ и лекарственных препаратов, приводит к сложности в получении нужных результатов. Основным результатом настоящего проекта будет создание фундаментальной основы для правильного выбора и модификации поверхности, которая позволит избегать неспецифическую адсорбцию внеклеточных нановезикул и с высокой спецификой выделать их субпопуляции. Требуемые характеристики в предлагаемом проекте достигаются за счет междисциплинарного научного подхода, объединяющего химию, физику, биологию и моделирование. Результат этого исследования позволит разработать новый класс отечественных инструментов, предназначенных для высокочувствительного выделения и анализа биологических объектов, которые являются маркерами заболеваний, а также могут быть использоваться для локальной доставки лекарственных препаратов.

Ожидаемые результаты
Основным результатом проекта будет определение поверхностной активности внеклеточных нановезикул в присутствии границ раздела, что является ключевым для будущей разработки высокочувствительной диагностической платформы и использования внеклеточных нановезикул для локальной доставки лекарственных препаратов. Реализация проекта позволит получить новые, оригинальные данные об особенностях внеклеточных нановезикул, которые выделяются раковыми клетками, их транспорта и адсорбции к границам раздела газ-жидкость, жидкость-жидкость и жидкость-твердое тело до и после модификаций. Ожидается, что эти данные позволят разработать оптимальные границы раздела для выделения субпопуляций внеклеточных нановезикул, и условия, позволяющие с высокой специфичностью регулировать адсорбцию и выделять их характерные субпопуляции из биологических образцов. Результаты проекта будут крайне важны для полного понимания фундаментальных принципов поведения поверхностно-активных внеклеточных нановезикул и послужат базой для создания новых медицинских диагностических технологий и методов для таргетной доставки лекарств. Уровень ожидаемых результатов опережает мировой, что определяется оригинальным, комплексным методологическим подходом и современными методами этого междисциплинарного исследования. Результаты проекта будут опубликованы в ведущих научных изданиях, индексируемых в базе данных «Сеть науки» (не менее 2 статей в журналах, входящих в список WOS и Scopus с импакт фактором не ниже 3.0).


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2020 году
Выделение внеклеточных нановезикул (ВН) является одним из самых важных этапов, который значительно влияет на дальнейший анализ, является по сегодняшний день не стандартизированным процессом, и преимущества использования различных методов активно обсуждаются (Salmond N., Nanoscale Adv., 2021). Ввиду отсутствия стандартного метода выделения ВН из культуральной среды и плазмы, в первую очередь было сделано сравнение наиболее часто использованных на сегодняшний день подходов: дифференциальное ультрацентрифугирование (Witwer K., J Extracell Vesicles, 2013), эксклюзионная хроматография (Baranyai., PLoS One, 2015) и ультрафильтрация (Kornilov R., . J Extracell Vesicles, 2018). Так как известно, что популяция ВН гетерогенна и состоит из разных субпопуляций (Crescitelli R., J Extracell Vesicles, 2020), которые отличаются между собой в биофизических свойствах и молекулярных сигнатурах, помимо выделения ВН, целью также было рассмотреть подходы для фракционирования ВН на субпопуляции по размеру. Итогом этого этапа проекта стал финальный протокол выделения и фракционирования ВН по размеру, который основан на комбинации фильтрации и эксклюзионной хроматографии. Используя этот подход, были выделены ВН из клеточных линий MCF7, MDA-MB-231, SKOV3, и MCF10, а также из плазмы здорового донора и фракционированы по размеру. Всего было получено 3 фракции, насыщенных ВН, из каждой клеточной линии и плазмы. На сегодняшний день не существует одного метода для проверки количества и качества изолированных ВН (Hartjes T., Bioengineering (Basel), 2018). Из-за этого была проведена детальная характеризация полученных образцов ВН комбинацией ключевых методик, в которую входили: анализ траекторий наночасиц (АТН), динамическое рассеяние света (ДРС), сканирующая электронная микроскопия (СЭМ), атомно-силовая микроскопия (АСМ), иммуно-электронная микроскопия, вестерн-блот, спектрофотометрический анализ белка А280 и использование бицинхониновой кислоты (BCA) для определения общего количества белка. Средний гидродинамический диаметр ВН, который был определен АТН, находился в диапазоне 90-140 нм с концентрацией 2Е10-4Е12 частиц/мл. ДЛС анализ показал средний размер ВН 73-140 нм, распределение по размерам содержало один пик и отсутствие пиков в диапазонах <20 нм и >1 мкм. Также, используя ДЛС и АТН удалось подтвердить различие размера ВН между полученными фракциями. Как ожидалось, ВН с наибольшим размером элюировались в ранних фракциях, в то время как ВН с наименьшим размером элюировались в более поздних фракциях. Структура ВН была визуализирована, используя СЭМ и АСМ, и было подтверждено, что анализируемые АТН и ДРС частицы были ВН. Вестерн-блот анализ подтвердил присутствие мембранных сигнатур ВН, включая мембранный белок CD9, CD63 и EpCAM, а отсутствие Calnexin чистоту полученных фракций. Была найдена зависимость относительного количества мембранных белков CD9 и CD63 от времени элюции, подчеркивая гетерогенность популяции ВН. Иммуноэлектронная микроскопия позволила подтвердить присутствие мембранного белка CD63, меченного золотыми наночастицами. BCA и АТН анализ показали прямую корреляцию между общего количества белка и концентрации ВН. Спектрофотометрический анализ белка (А280) позволил подтвердить благополучное разделение ВН, используя эксклюзионную хроматографию, от присутствующих в изначальном образце макромолекул, не связанных с ВН. Были выбраны три фракции, насыщенные ВН, для последующего изучения их поверхностной активности. Научной новизной и целью предлагаемого проекта на первый год являлось изучение поверхностной активности ВН и динамики адсорбции на границах раздела газ-жидкость и жидкость-жидкость. В качестве подхода планировалось использовать динамическое поверхностное натяжение для изучения диффузии и адсорбции ВН на границах раздела газ-жидкость и жидкость-жидкость. Для проведения данного эксперимента был разработан прибор, который позволил измерить поверхностное/межфазное натяжение почти в реальном времени, используя решения уравнения Юнга-Лапласа и теорию идентификации, чтобы найти поверхностное натяжение, которое минимизирует ошибки наименьших квадратов между теоретическими и экспериментальными формами границы фаз. Первоначально во время измерений, поверхностное натяжение было близким к поверхностному натяжению фосфатного буфера (~73 мН/м), но через короткое время поверхностное натяжение всех образцов, содержащих ВН, было динамическим и варьировалось от образца к образцу, особенно через 4 часа после образования висячей капли. Динамическое поверхностное натяжение (𝛾) со временем уменьшалось на 10-37% и результаты показали, что эти изменения ∆𝛾 линейно коррелируют с количеством ВН и общим количеством белка. Изменения межфазного натяжения фракций, насыщенных ВН, также присутствовали и линейная зависимость была найдена в системе ВН в фосфатном буфере-изопропилмиристат. Зависимость динамического поверхностного натяжения от концентрации ВН показала, что ВН поверхностно-активны. Предполагается, что поверхностная-активность ВН по большей мере связана с присутствием поверхностно-активных мембранных макромолекул (особенно мембранных белков) на их поверхности, так как была показана линейная зависимость поверхностного/межфазного натяжения от общего количества белка. Однако, в полученных фракциях популяции ВН, прямой зависимости поверхностной активности от размера ВН найдено не было. Линейная корреляция между поверхностным натяжением и квадратным корнем времени (𝛾 и √𝑡 для раннего времени; 𝛾 и 1/√𝑡 для позднего времени), подтвердила, что адсорбция ВН на разделе фаз ограничена диффузией. Представленная математическая модель адсорбции ВН на разделе фаз показала, что энергия адсорбции ВН (~6,44𝐸4*𝑘_𝐵*𝑇) значительно превышает энергию тепловых флуктуаций, которая находится ближе к 𝑘_𝐵*𝑇. Также было показано, что в исследованном здесь диапазоне концентраций ВН нет значительной разницы в поверхностном натяжении, когда время после создания висячей капли приближается к бесконечности. Эти данные позволили сделать вывод, что адсорбция ВН на границе раздела более термодинамически предпочтительна. Таким образом, адсорбция ВН на границе раздела является необратимым процессом и после длительного периода времени покрытие поверхности границы раздела фаз в итоге приблизится к максимуму 0,91. Также необратимая адсорбция означает, что при концентрации ВН ниже, чем ~3,4E-10 моль/м3, концентрация ВН в основном объеме капли начнет уменьшаться после создания монослоя ВН на разделе фаз. Результат также показал, что через 4 часа после формирования висячей капли, процент покрытой ВН поверхности варьирует от 20 до 80%, означая, что покрытие поверхности капли монослоем ВН потребует больше 4 часов.

 

Публикации


Аннотация результатов, полученных в 2021 году
Поверхность раздела жидкость-твердое тело часто встречается во время исследований и клинических работ. Например, взаимодействие белков с твердыми поверхностями очень распространено во многих природных процессах и биомедицинских технологиях (Hlady V. & Buijs J., Curr. Opin. Biotechnol. 1996). Адсорбция белка на твердой поверхности зависит от множества параметров, таких как размер белка, заряд, конформация, тип и текстура поверхности и другие. (Dee et al., An Introduction to Tissue - Biomaterial Interactions, John Wiley & Sons: Hoboken, N.J., 2003; Hlady V. & Buijs J., Curr. Opin. Biotechnol. 1996). В дополнение к границам раздела газ-жидкость и жидкость-жидкость ВН являются поверхностно-активными при наличии границы раздела жидкость-твердое тело. Было показано, что со временем хранения ВН при температуре 4°С и выше снижается их концентрация в объеме, что, как полагают, в первую очередь связано с их адсорбцией на поверхности раздела фаз (Evtushenko E.G. et al., PLoS one, 2020). Это адсорбционное свойство является одним из важнейших после выделения ВН из биожидкостей и должно учитываться при разработке диагностических платформ, препаратов или проведении экспериментальных работ. Изучение поверхностной активности ВН при наличии границы раздела жидкость-твердое было основной задачей второго года проекта. Помимо изучения поведения ВН в присутствии раздела фаз газ-жидкость, в последнее время также проводились исследования адсорбции ВН в присутствии раздела фаз жидкость-твердое тело. Было показано, что со временем хранения ВН при температуре 4°С и выше происходит уменьшение их концентрации в объеме. Гипотетически уменьшение концентрации ВН со временем может происходить из-за нескольких различных процессов: деградация белков ВН (Kumeda N. et al., Biol Pharm Bull., 2017); распад везикул на более мелкие фрагменты (Baranyai T. et al., PLoS One. 2015), сопровождающийся выходом их содержимого в окружающий раствор; агрегация (Bosch S. et al., Sci Rep., 2016) или слияние ВН (Maroto R., J Extracell Vesicles, 2017); адсорбция ВН к поверхности материала при хранении. Однако в рецензируемых статьях не были показаны экспериментальные доказательства последнего механизма (адсорбции), но многие исследователи заявляли, что этот процесс может происходить во время хранения ВН (Witwer K.W. et al., J Extracell vesicles, 2013, Richter et al., J Vis Exp., 2019; Zarvoni N. et al., Methods, 2015). В некоторых исследованиях и протоколах сообщалось об использовании пробирок с низким связыванием белка для хранения или работы с ВН (Enderle D. et al., PLoS One, 2015; Gaspar L.S. et al., Mol Ther-Methods Clin Dev., 2020) без экспериментальной основы для такого выбора. Недавно были представлены более подробные данные о влиянии поверхности пробирок и их покрытия на адсорбцию ВН (Evtushenko E.G. et al., PLoS One, 2020). Адсорбция ВН на поверхности материала протекает по-разному. Если концентрация высока и общее количество вещества намного больше, чем способность связывания с поверхностью, относительных потерь почти не происходит. Если концентрация достаточно низкая, то общее количество вещества мало по сравнению с поверхностной связывающей способностью, в итоге практически все ВН могут быть потеряны из объема раствора. Это свойство адсорбции исходит из поверхностной активности ВН. Это свойство после выделения ВН из биожидкостей является одним из наиболее важных и должно учитываться при разработке диагностических платформ, лекарственных препаратов или проведения экспериментальных работ. Изучение поверхностной активности ВН в присутствии раздела фаз жидкость-твердое тело являлось основной задачей второй части проекта. В результате исследований были получены новые данные об особенностях поведения поверхностно-активных ВН в присутствии границы раздела фаз жидкость-твердое тело. В отличие от уже опубликованных работ, твердым телом являлась поверхность различных материалов, таких как полипропилен, стекло, золото и кремний, которые часто используются при работе с ВН. Концентрация ВН, которая использовалась в данном исследовании, варьировалась от 4Е8 до 8Е10 #/мл. Результаты Анализа Траекторий Наночастиц (АТН) показали присутствие разной степени неспецифической адсорбции ВН (от 2 до 36% ВН, изначально присутствующих в образце) ко всем не модифицированным материалам. Было определено, что использование стекла и полипропилена, модифицированного БСА, приводит к наименьшим потерям ВН в объеме, в то время как кремний приводит к наибольшим потерям ВН из-за их неспецифической адсорбции к поверхности после 6 и 24 часов хранения при 4°C и 20°C. Неспецифическая адсорбция к использованным в этом проекте поверхностям материалов без или с модификацией БСА была также впервые подтверждена, используя Сканирующую Электронную Микроскопию, Атомно-Силовую Микроскопию, Рамановскую спектроскопию, Темнопольную Лазерную Ультрамикроскопию (ТЛУ), Кварцевый Микробаланс, оптический сенсор, состоящий из интерферометра Маха-Цендера в микрофлюидном чипе и Биослойный Интерферометр. Модификация поверхности, используя БСА, позволяет уменьшить количество неспецифически адсорбированных ВН примерно в 2 раза. Также было выявлено, что при низкой температуре (4°C) и после инкубации не более 6 часов происходила наименьшая адсорбция и потеря ВН. Если сравнивать температуру хранения 4°C и 20°C после 24 часов инкубации, разницы в количестве адсорбированных ВН к поверхности не наблюдалось. При сравнении ВН клеточных линий, которые использовались в данном проекте, после 6 часов инкубации в полипропиленовых пробирках наблюдалась разница между ВН клеточных линий MCF7, MDA-MB-231, SKOV3 и ВН клеточных линий MCF10A и ВН, выделенные из Плазмы. ВН MCF10A и Плазмы показали наименьшую потерю из-за адсорбции к поверхности полипропилена по сравнению с ВН клеточных линий рака молочной железы и яичника. Предполагается, что эта разница основана на большей поверхностной активности ВН раковых клеток именно с этим полимером, которая может исходить из характерных мембранных белков или других макромолекул ВН. Была также разработана математическая модель адсорбции ВН к твердым телам, используя программу Comsol Multiphysics, и проведено сравнение с результатами, которые были получены экспериментально на основе АТН. Моделирование адсорбции ВН к поверхности твердых тел позволило определить коэффициенты адсорбции, которые варьировали от 4 до 44 [м3/(с·мол)] и зависели от температуры и поверхности материала. Наибольший коэффициент адсорбции показала модель с кремнием (41-44 м3/(с·мол) при 20°С), в то время как наименьшее количество ВН адсорбировалось к полипропилену, покрытому БСА, и стеклу (коэффициент адсорбции 7.5-11 м3/(с мол) при 20°С). При температуре 4°C коэффициент адсорбции ВН к кремнию был в 1.5-2 раза меньше, чем при 20°C. Сравнивая коэффициенты адсорбции ВН к полипропилену была также отмечена разница между клеточными линиями рака (молочной железы - MCF7, MDA-MB-231 и яичника - SKOV3 имели диапазон коэффициента адсорбции 18-25 м3/(с мол) при 20°С и 11-26 м3/(с мол) при 4°С) и контролями (MCF10A и плазма здорового донора имели диапазон коэффициента адсорбции 12-17 м3/(с мол) при 20°С и 10-11 м3/(с мол) при 4°С). Это сново подчеркивает, что поверхностная активность ВН раковых клеток может быть выше в присутствии определенных поверхностей, что может также влиять на их активность в биологических системах. Полученные данные модели соответствовали экспериментальным данным АТН c относительно высокими коэффициентами детерминации, что позволяет сделать вывод, что разработанная модель с высокой точностью описывает процесс адсорбции ВН к поверхности. Результаты, полученные в этой части проекта позволили определить зависимость поверхностной активности от типа границы раздела, что в будущем позволит найти оптимальную составляющую поверхности для выделения и квантификации максимального количества ВН, принадлежащих к нужной субпопуляции, с высокой специфичностью.

 

Публикации

1. Чернышёв В. С., Чупров-Неточин Р. Н., Цыденжапова Е., Свирщевская Е. В., Полтавцева Р. А., Мердалимова А., Ященок А., Кешелава А., Сорокин К., Кешелава В., Сухих Г. Т., Горин Д., Леонов С., Скляр С. Asymmetric depth-filtration: A versatile and scalable method for high-yield isolation of extracellular vesicles with low contamination Journal of Extracellular Vesicles, - (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1002/jev2.12256

2. Чернышёв В.С., Ноздриюхин Д., Чупров-Неточин Р., Цыденжапова Е., Новоселова М., Горин Д., Ященок А. Engineered multicompartment vesicosomes for selective uptake by living cells Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, - (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2022.112953

3. Чернышёв В.С., Скляр М. Quantification of Desiccated Extracellular Vesicles by Quartz Crystal Microbalance Biosensors, - (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/bios12060371

4. Чернышёв В.С., Чупров-Неточин Р.Н., Цыденжапова Е., Ван Девенер Б., Леонов С., Горин Д., Скляр М. Dynamic surface tension probe for measuring the concentration of extracellular vesicles Biochemical and Biophysical Research Communications, Volume 609, Pages 189-194 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2022.04.017

5. Ященок А.М., Чернышёв В.С., Коновалова Е.В., Холоденко Р., Цыденжапова Е., Шипунова В.О., Шульга А.А., Деев С.М., Горин Д.А. AntiCD63Oligonucleotide Functionalized Magnetic Beads for the Rapid Isolation of Small Extracellular Vesicles and Detection of EpCAM and HER2 Membrane Receptors using DARPin Probes Analysis & Sensing, - (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1002/anse.202200059


Возможность практического использования результатов
1) Разработанная методика определения концентрации выделенных внеклеточных нановезикул измерением динамического поверхностного натяжения в образце может быть использована для рутинной работы в лаборатории, направленной на их изучение. Прибор представляет собой измеритель поверхностного натяжения для анализа в реальном времени, шприц с наконечником, который позволяет формировать висячую каплю образца, и программное обеспечение. 2) Во время проекта был разработан и протестирован новым метод выделения внеклеточных везикул, который основан на глубинной фильтрации. Создан прототип, который основан на комбинации глубинной фильтрации и микрофлюидике. Планируется производить микрофлюидный чип для выделения внеклеточных везикул для исследовательских целей. 3) Во время проекта был также разработан и протестирован новым метод выделения субпопуляций внеклеточных везикул, используя магнитные частицы, модифицированные дарпином. Планируется производить эти частицы для исследовательских целей.