КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 22-14-20001

НазваниеПьезоэлементы для исследования механизмов межклеточной адгезии и создания систем экспресс-тестирования антибиотикорезистентности

РуководительПлескова Светлана Николаевна, Доктор биологических наук

Организация финансирования, регион федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского", Нижегородская обл

Период выполнения при поддержке РНФ 2022 г. - 2024 г. 

Конкурс№66 - Конкурс 2022 года «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований отдельными научными группами» (региональный конкурс).

Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-209 - Биотехнология (в том числе бионанотехнология)

Ключевые словаАнтибиотикорезистентность, бактериальные штаммы, система экспресс-тестирования, атомно-силовая микроскопия, пьезосенсоры, резонансная частота, FS-спектроскопия, сила адгезии, энергия адгезии, специфические адгезионные контакты

Код ГРНТИ62.01.00


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Физические методы исследования давно и прочно вошли в клиническую практику. В настоящее время невозможно представить медицину без рентгеновских аппаратов, МРТ, физиолечения, микроскопических методов диагностики, радиотерапии и множества других вариантов диагностики, лечения и профилактики. Таким образом, внедрение новых объективных физических методов в медицинскую практику является важной и актуальной задачей. Атомно-силовая микроскопия (АСМ) является одной из разновидностей сканирующей зондовой микроскопии, которая позволяет получать нанометровое разрешение (наряду со сканирующей электронной микроскопией) при этом исследуя биологические объекты в нативной среде. Однако довольно скоро стало понятно, что АСМ является гораздо более универсальным инструментом, чем все остальные методы микроскопии: она может быть использована не только для наблюдений за живыми объектами, но и для манипуляций с ними. В частности, благодаря АСМ в настоящее время в клетку вводятся различные вещества (например, квантовые точки), извлекаются отдельные молекулы (например, РНК для генно-инженерных манипуляций), изучается сворачивание (фолдинг) и разворачивание (анфолдинг) белка с определением сил межмолекулярных взаимодействий, оцениваются упруго-механические свойства клеток и вирионов, исследуется кинетика биологических процессов (благодаря разновидности - высокоскоростной АСМ), определяется изменение рН, заряда клеток в режиме реального времени (благодаря разновидности - сканирующей ион-проводящей микроскопии), проводятся нанохирургические операции (например, разрезание вирионов с одновременным определением механических характеристик укладки нуклеиновых кислот). В настоящее время в России большое количество лабораторий получило возможность использовать атомно-силовые микроскопы, в том числе отечественного производства (NT-MDT). К сожалению, анализ русскоязычных источников показывает, что АСМ используется в основном исключительно как метод микроскопии, в лучшем случае, для определения упруго-механических свойств клеток. Поэтому развитие других вариантов использования АСМ является чрезвычайно актуальной задачей. В рамках выполнения предыдущего проекта РНФ нами была разработана новая методика определения суммарной силы и работы адгезии между двумя клетками, одна из которых фиксирована на подложке, а другая на кантилевере. Методика обладает абсолютной новизной как в отечественной, так и в мировой практике, поскольку позволяет учитывать интегральный характер межклеточных взаимодействий. Она была апробирована при исследовании силы адгезии между однотипными видами клеток (нейтрофил-нейтрофил и лимфоцит-лимфоцит). В представленном проекте методика впервые будет использована для изучения адгезионных контактов между нейтрофилами и эндотелиоцитами. Будет определена сила и работа суммарного взаимодействия между рецепторами эндотелиальной клеточной линии (эндоглином, VCAM-1, P- и E-селектинами) и соответствующими рецепторами нейтрофилов (сиалированным антигеном Льюиса или CD15, PSGL-1 и ESL-1). Определение этих параметров, а также их модуляция грамположительными и грамотрицательными микроорганизмами внесет существенный вклад в реализацию фундаментальной концепции "контролируемого воспаления". Моделирование in vitro адгезионных контактов в ситуациях септицемии и септикопиемии позволит определить границы возможной регуляции воспаления и найти точки приложения для управления этим процессом, поскольку адгезия является первым и принципиальным шагом в процессе трансэндотелиальной миграции нейтрофила, определяющей эффективность проинфламматорной стратегии защиты организма. Еще более важным является решение практической задачи создания прототипа системы экспресс-тестирования резистентности к антибиотикам. Пьезосенсор, лежащий в основе механической части АСМ, может быть использован в качестве "нановесов", поскольку обладает крайне высокой чувствительностью. Здесь, в отечественных разработках ситуация более оптимистичная. В частности, две пионерские отечественные группы активно работают по данной проблематике. Это группа профессора Игоря Владимировича Яминского (МГУ им. М.В. Ломоносова) - в основном, работы связаны с использованием кантилевера как нановесов и группа профессора Юрия Дмитриевича Иванова (НИИ биомедицинской химии имени В.Н. Ореховича) - в работе используют кантилеверы в качестве пьезодатчиков, для детекции микроорганизмов в оригинальной разработанной ими методике. Однако ни одна из этих групп не использует пьезосенсоры для регистрации антибиотикорезистентности. В мировой практике впервые идею использования принципа АСМ в тестировании антибиотикорезистентности высказала группа профессора S. Kasas. По сути, используется тот же принцип "нановесов", когда метаболически-активные бактерии вызывают колебания кантилевера, регистрируемые оптической системой микроскопа. S. Kasas впервые зарегистрировал увеличение амплитуды колебаний кантилевера после фиксации на нем бактерий и ее резкое снижение в случае воздействия на бактерии антибиотика, к которому данный штамм был чувствителен. В настоящее время в клинических лабораториях тестирование резистентности к антибиотикам занимает не менее трех дней. Идея, предложенная S. Kasas, позволяет снизить это время до одного часа. Однако и у созданной им системы есть существенные недостатки: (1) тестирование только одного антибиотика; (2) дороговизна метода, поскольку АСМ-микроскопы имеются на вооружении только крупных научных учреждений, а не клиник. В предложенном нами проекте использование АСМ предусмотрено только на первом этапе для отработки системы детектирования пьезосенсора, а далее будет разработан прототип прибора, который будет лишен всех перечисленных недостатков и: (1) будет мобильным и недорогим; (2) будет многоканальным и позволит одновременно тестировать резистентность к нескольким (предполагается не менее 6) антибиотикам. Создание такого прибора позволит быстро внедрить в клинику метод экспресс-тестирования (до часа) резистентности бактерий к антибиотикам, что даст возможность быстрого назначения клиницистами эффективного антибиотика и позволит в значительной степени решить проблему персистенции резистентных нозокомиальных штаммов, и увеличит эффективность лечения при инфекционных заболеваниях. Таким образом, глобальной задачей проекта является внедрение в клиническую практику еще одного эффективного физического метода диагностики антибиотикорезистентности, а сам проект обладает абсолютной новизной, фундаментальной и практической значимостью.

Ожидаемые результаты
Впервые будут исследованы суммарная сила и работа адгезии между нейтрофильными гранулоцитами и эндотелиоцитами, показатель принципиальный для трансэндотелиальной миграции клеток. Взаимодействие между основными классами клеток системы неспецифической резистентности будет кондиционировано ведущими возбудителями нозокомиальных инфекций - Staphylococcus aureus и Escherichia coli. Впервые будет проведено моделирование двух ситуаций - септицемии (бактерии в крови) и септикопиемии (бактерии вне кровяного русла, в очагах) и на основании полученных значений силы и работы адгезии будет исследовано, как меняется стратегия поведения нейтрофильного гранулоцита в зависимости от разных вариантов развития септического процесса. Эти исследования являются принципиально важными для науки, поскольку они внесут существенный вклад в развитие концепции "контролируемого воспаления", что позволит не только прогнозировать тяжесть генерализованных инфекций, но и разрабатывать методы "прицельного воздействия" противоинфламматорной терапии. Будет создана и охарактеризована коллекция клинических изолятов микроорганизмов для анализа распространения мультирезистентности в клинике. Будет реализована методика экспресс-тестирования резистентности микроорганизмов к антибиотикам на базе атомно-силового микроскопа. Будут подобраны оптимальные кантилеверы и среда анализа для тестирования чувствительности бактерий к разным антибиотикам для получения новых знаний о механике процесса осцилляции и о влиянии на реакции в системе «доза-эффект» окружающей среды. Будет произведен перенос отработанной системы на созданный прототип, с последующим созданием многоканальной системы экспресс-диагностики с набором датчиков для теоретического расчета и практического решения вопроса о возможности проведения параллельных измерений. Будет создана компьютерная программа для обеспечения работы прибора. В конечном итоге, будет разработан прототип прибора, который позволит существенно сократить время определения чувствительности/ резистентности бактерий к антибиотикам с трех-четырех суток до 1 часа. Кроме того, будет достигнуто уменьшение количества реактивов, необходимых для диагностики за счет оптимизации процесса диагностики. Прибор будет широко востребован в клинической практике и принесет снижение расходов на лечение пациентов, будет способствовать существенному снижению смертности благодаря рациональной антибиотикотерапии. Таким образом, впервые в мире будут разработаны параллельные многоканальные системы экспресс-тестирования резистентности бактерий к антибиотикам, что будет являться прорывным направлением в мировой наносенсорике.


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2022 году
Для решения фундаментальной задачи исследования было показано, что непраймированные эндотелиоциты (культура клеток EA.hy926) в течение длительного времени стабильно экспрессируют Р- и Е-селектины, интегрины VCAM-1, ICAM-1 и эндоглин, а непраймированные нейтрофилы основные молекулы комплекса интегринов (CD18, CD11a, CD11b). Стабильность экспрессии позволила оценить суммарную силу и работу межклеточных адгезионных контактов в системе «нейтрофил-эндотелиоцит». Выявлена значительная вариабельность силы и работы адгезии в зависимости от донора нейтрофилов. Измерения силы адгезии показало, что она может варьировать от 20 до 50 пН, а работа адгезии определяется в диапазоне от 200 до 800 аДж в зависимости от донора нейтрофилов. Моделирование ситуации септикоцемии in vitro дает однозначные данные о статистически значимом снижении силы и работы межклеточных адгезионных контактов под воздействием как грамположительных (S.aureus), так и грамотрицательных (E.coli) бактерий. Таким образом, при септикоцемии одним из факторов патогенности бактерий может являться стратегия срыва адгезии - начального этапа процесса трансэндотелиальной миграции нейтрофилов. Происходит своеобразный «арест» нейтрофилов в кровяном русле. Показано преимущество метода сканирующей ион-проводящей микроскопии в исследовании живых клеток крови, которое позволяет в высокоскоростном режиме получать не только морфологическое изображение клетки, но и строить карту ригидности лимфоцитов, нейтрофилов, эритроцитов. Для решения прикладной задачи исследования была создана коллекция бактериальных штаммов (клинических изолятов). Был определен их биохимический профиль и чувствительность/ резистентность к антибиотикам классическим диско-диффузионным методом. Была разработана принципиально новая система детекции чувствительности/ резистентности к антибиотикам на основе определения нанодвижений бактерий. Нанодвижения регистрировались по осцилляции кантилевера на атомно-силовом микроскопе. Для оптимального снятия DFL сигнала были отработаны: температура, время, среда, в которой проводилось наблюдение, концентрация антибиотика, режим функционализации кантилевера. Кроме того, был выбран математический алгоритм обработки сигнала, дающий релевантные результаты. Созданная система дает следующие варианты поведения: (1) незначительные колебания функционализированного кантилевера – контроль, (2) сильная осцилляция связанная с нанодвижениями бактерий на кантилевере, которые, в свою очередь, обусловлены метаболической активностью бактерий, (3) падения амплитуды осцилляции вследствие гибели бактерий, вызванной воздействием антибиотика, свидетельствующие о чувствительности бактерий к антибиотику, (4) сохранение высокой амплитуды колебаний или даже ее усиление после воздействия антибиотика, свидетельствующее о резистентности бактерий к антибиотику. Проведено сравнение вновь созданной системы с классическими методами оценки антибиотикорезистентности: диско-диффузионным и методом подсчета КОЕ и показано полное соответствие получаемых результатов. Преимуществом вновь созданной системы является то, что она дает ответ об антибиотикорезистентности уже через час после начала исследования.

 

Публикации

1. Безруков Н.А., Плескова С.Н., Бобык С.З., Боряков А.В. High-Resolution Scanning Ion-Conductance Microscopy for the Study of Blood Cell Morphology and Rigidity Opera Medica et Physiologica, Bezrukov N.A. High-Resolution Scanning Ion-Conductance Microscopy for the Study of Blood Cell Morphology and Rigidity / N.A. Bezrukov, S.N. Pleskova, S.Z. Bobyk, A.V. Boryakov // Opera Medica et Physiologica. - 2022. Vol. 9 № 2. - P. 5-14 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.24412/2500-2295-2022-2-5-14

2. Плескова С.Н., Бобык С.З., Крюков Р.Н., Горшкова Е.Н., Безруков Н.А. Staphylococcus aureus Causes the Arrest of Neutrophils in the Bloodstream in a Septicemia Model Microorganisms, Pleskova S.N. Staphylococcus aureus Causes the Arrest of Neutrophils in the Bloodstream in a Septicemia Model / S.N. Pleskova, S.Z. Bobyk, R.N. Kriukov, E.N. Gorshkova, N.A. Bezrukov // Microorganisms. - 2022. - Vol. 10(9). - 1696. (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/microorganisms10091696

3. Безруков Н.А., Бобык С.З., Плескова С.Н. Сканирующая ион-проводящая микроскопия для визуализации нейтрофильных гранулоцитов Биосистемы: организация, поведение, управление: Тезисы докладов 75-й Всероссийской с международным участием школыконференции молодых ученых (Н. Новгород, 19–22 апреля 2022 г.). Н. Новгород, Университет Лобачевского. 2022., Биосистемы: организация, поведение, управление: Тезисы докладов 75-й Всероссийской с международным участием школы конференции молодых ученых (Н. Новгород, 19–22 апреля 2022 г.). Н. Новгород, Университет Лобачевского. 2022. - С. 21. (год публикации - 2022)

4. Безруков Н.А., Бобык С.З., Плескова С.Н. Сканирующая ион-проводящая микроскопия для исследования морфологии и ригидности клеток крови Первая научно-практическая школа-конференция Института наук о жизни и биомедицины ДВФУ, Владивосток, 8–10 июня 2022 г. : материалы конференции. – Владивосток : Изд-во Дальневост. федерал. ун-та, 2022., Первая научно-практическая школа-конференция Института наук о жизни и биомедицины ДВФУ, Владивосток, 8–10 июня 2022 г. : материалы конференции. – Владивосток : Изд-во Дальневост. федерал. ун-та, 2022. – С. 26. (год публикации - 2022) https://doi.org/10.24866/7444-5334-3

5. Лазаренко Е.В., Плескова С.Н. Идентификация осцилляций с помощью атомно-силового микроскопа Будущее технической науки: сборник материалов XXI Всероссийской молодежной научно-техн. конф.; НГТУ им. Р.Е. Алексеева. – Нижний Новгород, 2022., Будущее технической науки: сборник материалов XXI Всероссийской молодежной научно-техн. конф.; НГТУ им. Р.Е. Алексеева. – Нижний Новгород, 2022. – С. 346-347. (год публикации - 2022)

6. - Ученые создали сверхбыстрый анализ на чувствительность к антибиотикам Российская газета, 26 августа 2022 г. №8838 (год публикации - )

7. - Интервью и сюжет телеканал Волга, 23 августа 2022 г. (год публикации - )


Аннотация результатов, полученных в 2023 году
При моделировании бактеремии важно отслеживать изменение уровня экспрессии селектинов и интегринов, играющих важнейшую роль в реакциях трансэндотелиальной миграции (особенно на стадиях адгезии, роллинга и переползания). Экспрессию молекул на мембране эндотелиальных клеток детектировали с использованием флуоресцентной микроскопии, а уровень экспрессии оценивали методом проточной цитометрии. В качестве положительного контроля использовали TNF. Уровень экспрессии эндоглина статистически значимо увеличивался через 4 ч наблюдений под влиянием S. aureus, экспрессия VCAM1 возрастала через 1 ч под действием TNF и снижалась через 3-4 ч под действием S. aureus. Количество обнаруживаемых на поверхности эндотелиальных клеток P- и Е- селектинов также снижалось под действием золотистого стафилококка на 2-4 ч наблюдения, при этом наблюдалась индукции экспрессии этих молекул через 1 ч под влиянием TNF. При анализе основных молекул адгезии нейтрофилов (CD18, CD11a, CD11b) не было выявлено каких-либо значимых изменений в уровнях экспрессии этих молекул с течением времени. Подавление экспрессии VCAM-1, P- и E-селектинов является возможным объяснением снижения адгезионных взаимодействий между нейрофилами и эндотелиоцитами, которое было обнаружено на первом этапе исследования. Методом Вестерн-блота впервые показано, что снижение представительства селектинов, интегринов и адгезинов не связано с шеддингом рецепторов с поверхности мембран эндотелиоцитов и нейтрофилов. Однако, наличие следовых количеств растворимых молекул VCAM-1 после инкубации с E.coli заставило нас задуматься о возможном разрушении растворимых форм рецептора бактериальными протеазами, поэтому на следующем этапе исследования будут использованы ингибиторы бактериальных протеаз для подтверждения отсутствия шеддинга рецепторов под воздействием исследуемых штаммов. Исследование опсонизации S.aureus и E.coli на кондиционирующий эффект бактерий в системе взаимодействия «эндотелиоцит-нейтрофил» показало, что сила адгезии между нейтрофилом и эндотелиоцитом снижается в большей степени под воздействием опсонизированных S.aureus в сравнении с неопсонизированными, тогда как работа на разрыв, напротив, статистически значимо увеличивается. Это может свидетельствовать о том, что при кондиционировании взаимодействия опсонизированными S.aureus аффинность связи между рецепторами иммунных клеток снижается, однако, клетки пытаются скомпенсировать это снижение за счет установления большего количества специфических и неспецифических межклеточных контактов. В случае кондиционирования адгезионных процессов E. coli наблюдается обратная тенденция: под воздействием опсонизированных бактерий сила адгезии между нейтрофилом и эндотелиоцитом падает меньше. Это может быть обусловлено тем фактом, что липополисахарид (ЛПС) и другие поверхностные факторы патогенности оказываются заэранированными опсонинами и не вносят такого существенного вклада в снижение межадгезионных контактов. Нельзя также исключить сборку мембран-атакующего комплекса комплемента, который мог вызвать разрушение бактериальных клеток. Требуется дополнительное исследование влияния ЛПС на адгезию между нейтрофилами и эндотелиоцитами. Важным выводом является выявление разного эффекта опсонизации на кондиционирующий эффект, вызванный Грам(+) и Грам(-) бактериями в системе адгезионных контактов между нейтрофилами и эндотелиоцитами. Было разработано несколько двухсекционных моделей для исследования процесса трансэндотелиальной миграции нейтрофилов по градиенту хемоаттрактации с помощью высокоразрешающей микроскопии. Было показано, что использование атомно-силовой микроскопии (АСМ) невозможно для моделирования процесса септикопиемии и исследования диапедеза нейтрофилов. Это объясняется: (1) наличием ундуляции мембраны, на которой стерильно выращивалась культура эндотелиальных клеток Ea.hy926, при использовании резонансных режимов сканирования, и разрыв мембраны при использовании контактного режима, (2) ограничениями сканирования по оси z (при исследовании процесса миграции нужно не просто отслеживать морфологию монослоя, но высоты сканера должно хватать на прописывание эндотелиоцитов и нейтрофилов). Выходом явилось использование сканирующей ион-проводящей микроскопии (СИПМ), обладающей преимуществами перед АСМ: (1) практически полным отсутствием воздействия на клетки, (2) намного более высокой скоростью сканирования, (3) намного более высоким разрешением при сканировании по оси z (за счет "прыжкового" режима"), (4) возможностью создавать карту ригидности клеток. Была получена информация не только о микроструктуре мембран эндотелиоцитов, но и определена структура микрофиламентозных образований и ядрышек. Ригидность мембран эндотелиоцитов варьировала от 357 до 796 Па. Максимальная ригидность отмечается у филаментов клеток – 1536 Па, и ядрышек – 1729 Па. Для решения задачи по экспресс-тестированию антибиотикорезистентности использовали АСМ в режиме осцилляции. Для подтверждения релевантности вновь разработанной методики использовали классические методы: (1) подсчета КОЕ для определения жизнеспособности (предыдущий год), (2) диско-диффузионный (в прошлом и в этом году). Результаты всех трех используемых методов полностью совпадают. Но в отличие от классических методов использование экспресс-тестирования антибиотикорезистентности методом АСМ по определению нанодвижений бактерий позволяет получить результаты по чувствительности/ резистентности уже через час от начала исследования. То, что нанодвижения бактерий обусловлены их метаболической активностью было доказано благодаря использованию «бедных» и «богатых» питательных сред. Аналитический сигнал DFL падал статистически значимо у всех штаммов при культивировании в физиологическом растворе, по сравнению с более «богатой» средой LB. Анализ профилирования продемонстрировал особенности метаболической активности бактерий в разных питательных средах. В частности, S.aureus 2879 M и P.mirabilis 649-2 оказались высокочувствительными к высокой концентрации соли и давали слабый отклик на среде LB (Миллер), тогда как E.coli 321 была индифферентна к концентрации соли в LB, но резко снижала метаболическую активность и нанодвижения в МПБ (аналитический сигнал был даже ниже, чем в физиологическом растворе), а K.pneumonia 173-p2, напротив, отдавала предпочтение высокой концентрации соли, ее максимальная метаболическая активность регистрировалась на среде LB (Миллер). Помимо культуральных методов анализа для доказательства гибели бактерий под воздействием антибиотиков была использована высокоразрешающая сканирующая электронная микроскопия, которая также продемонстрировала полное совпадение результатов с культуральными методами и с разработанным нами методом экспресс-тестирования. АСМ в режиме осцилляции использован для тестирования антибиотикорезистентности широкого диапазона микроорганизмов, выделенных и охарактеризованных на предыдущем этапе исследования: P. mirabilis 649-2, K.pneumoniae 173-p2, и культуры высокочувствительные E.coli 321, S. aureus 2879M, A.baumannii 173-p1. Все эксперименты проводились не менее чем в 4-5 повторностях, помимо самого факта чувствительности/ резистентности исследовалась динамика этого свойства. Обнаружена интересная тенденция: при определении чувствительности/резистентности бактерий к антибиотикам можно уже на основе времени падения осциллирующего сигнала, свидетельствующего о жизнеспособности бактерий, сделать прогноз о степени чувствительности бактерий к антибиотикам. В случае падения сигнала на 15 минуте можно рассчитывать на высокую чувствительность бактерии к антибиотику, в случае падения сигнала на 30-45 мин можно ожидать умеренную чувствительность, а если сигнал не падает до 60 мин исследования, то бактерия с высокой вероятностью будет резистентна к антибиотику. Полученные данные являются чрезвычайно перспективными и привлекательными для использования в клинической практике и позволят избежать стадии эмпирической антибиотикотерапии.

 

Публикации

1. Плескова С.Н., Лазаренко Е.В., Безруков Н.А., Бобык С.З. Боряков А.В. Крюков К.Н. Differences in bacteria nanomotion profiles and neutrophil nanomotion during phagocytosis Frontiers in Microbiology, Front. Microbiol. 14:1113353 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1113353

2. Плескова С.Н., Лазаренко Е.В., Безруков Н.А., Крюков Р.Н., Боряков А.В., Докукин М.Е., Суродин С.И. Nanomotion of bacteria to determine metabolic profile Nanotechnology and Precision Engineering, Nano. Prec. Eng. 7, 013001 (2024) (год публикации - 2024) https://doi.org/10.1063/10.0022171

3. Плескова С.Н., Лазаренко Е.В., Судакова И.С., Крюков Р.Н., Безруков Н.А. Новый метод экспресс-детекции антибиотикорезистентности Прикладная биохимия и микробиология, T. 59, № 1, стр. 74-80 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.31857/S0555109923010075

4. Безруков Н.А. Картирование ригидности эндотелиальных клеток методом сканирующей ион-проводящей микроскопии XXIX Всероссийская конференция молодых учёных с международным участием «Актуальные проблемы биомедицины – 2023» ФБГОУ ВО Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. И.П. Павлова, г. Санкт-Петербург, Материалы XXIX Всероссийской конференции молодых учёных с международным участием «Актуальные проблемы биомедицины – 2023». – с. 167-169 (год публикации - 2023)

5. Безруков Н.А., Плескова С.Н., Бобык С.З Динамические изменения в системе «Нейтрофильный гранулоцит – Эндотелиоцит», исследованные методом сканирующей ион-проводящей микроскопии Будущее биомедицины: IV форум молодых учёных, о. Русский – Владивосток (2023), Будущее биомедицины 2023: IV форум молодых учёных, о. Русский: материалы конференции. – Владивосток : Издательство Дальневосточного федерального университета. – с. 12 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.24866/7444-5488-3

6. Лазаренко Е.В., Плескова С.Н. Детекция нанодвижений для определения антибиотикорезистентности и метаболического профиля бактерий Будущее технической науки: XXII Всероссийская молодежная научно-техническая конференция, Будущее технической науки: сборник материалов XXII Всероссийской молодежной научно-техн. конф.; НГТУ им. Р.Е. Алексеева. – Нижний Новгород, 2023. – 566-567 (год публикации - 2023)

7. Лазаренко Е.В., Плескова С.Н. Подбор параметров сенсорного элемента для детекции нанодвижений методом атомно-силовой микроскопии Биосистемы: организация, поведение, управление: 76-ая Всероссийская школа-конференция молодых ученых. г. Нижний Новгород, Университет Лобачевского., Биосистемы: организация, поведение, управление: Тезисы докладов 76-й Всероссийской школы-конференции молодых ученых (Н. Новгород, 11–14 апреля 2023 г.). Н. Новгород, Университет Лобачевского. 2023. 188 с. (год публикации - 2023)

8. Спирина В.Ю., Рябова Н.В., Безруков Н.А., Веселова Т.А. Изучение реологических свойств эритроцитов пациентов с гипергликемией, гиперхолестеролемией и сочетанными патологиями методом акустической интерферометрии Биосистемы: организация, поведение, управление: 76-ая Всероссийская школа-конференция молодых ученых. г. Нижний Новгород, Университет Лобачевского., Биосистемы: организация, поведение, управление: Тезисы докладов 76-й Всероссийской школы-конференции молодых ученых (Н. Новгород, 11–14 апреля 2023 г.). Н. Новгород, Университет Лобачевского. 2023. 295 с. (год публикации - 2023)

9. - Atomic force microscopy may enable quick differentiation of metabolic profiles in bacteria AIP Scilight, Scilight 2023, 481102 (2023), https://doi.org/10.1063/10.0022567 (год публикации - )