КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ
Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.
ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ
Номер проекта 24-14-00295
НазваниеПерспективные подходы в ‘in meso’ кристаллизации больших мембранных белков для структурных исследований и разработки лекарств
Руководитель Куклин Александр Иванович, Кандидат физико-математических наук
Организация финансирования, регион федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Московский физико-технический институт (национальный исследовательский университет)" , г Москва
Конкурс №92 - Конкурс 2024 года «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований отдельными научными группами»
Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни; 04-204 - Биофизика
Ключевые слова Кристаллизация белков, рентгеноструктурный анализ, структурная биология, мембранные белки, липидные кубические фазы, мембрано-миметические системы, малоугловое рассеяния
Код ГРНТИ34.15.15
ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ
Аннотация
Мембранные белки (МБ) являются ключевыми в жизненно важных процессах, таких как перенос ионов через мембрану, преобразование энергии, передача сигналов и другие. Из-за их значительной роли в физиологии человека мембранные белки являются мишенями около 60% используемых в настоящее время лекарств.
Для разработки лекарств нового поколения используется метод, основанный на получении атомарной структуры белка. Самым эффективным методом получения структуры мембранных белков до сих пор остаётся метод рентгеновской дифракции на белковых кристаллах. Для этого необходимо получение кристаллов мембранных белков, что является бутылочным горлышком в структурно-функциональных исследованиях МБ и в разработке лекарственных препаратов методом “от структуры” (structure-based drug design). Как следствие, уникальные структуры мембранных белков составляют всего лишь ~1 % всех доступных уникальных белковых структур, представленных в базе www.rcsb.org.
Одним из наиболее эффективных методов кристаллизации МБ является использование в липидных кубических фазах (ЛКФ) (in meso кристаллизация). В отличие от метода in surfo, использующего солюбилизированные в детергенте МБ, in meso предполагает реконституцию мембранных белков в ЛКФ, обеспечивая белку мембраномиметическое окружение. Метод in meso сделал возможным существенный прорыв в исследованиях рецепторов, сопряжённых с G-белков (GPCR), за который Роберт Лефковиц и Брайан Кобилка были удостоены Нобелкской премии по химии в 2012 году.
Получение кристаллов в ЛКФ с последующим исследованием структуры в настоящий момент возможно только для небольших мембранных белков. Из-за ограниченных размеров водных каналов липидных кубических фаз мембранные белки с большой водорастворимой или мембранной частью, а также крупные комплексы мембранных белков не могут быть кристаллизованы методом in meso.
Метод криоэлектронной микроскопии одиночным молекул (крио-ЭМ), получивший широкое распространение за последнее десятилетие, имеет ряд ограничений в структурно-функциональных исследованиях мембранных белков. На сегодняшний день его использование затруднительно в случае относительно малых (< 110 кДа) мембранных белков. А для больших мембранных белков, которые являются более удобными объектами для метода крио-ЭМ, не удаётся достичь высокого (лучше 2.5 Å) разрешения структуры их трансмембранных доменов. Таким образом, крио-ЭМ не является полноценной альтернативой рентгеноструктурному анализу в задачах исследования мембранных белков.
Поскольку получение кристаллов мембранных белков до сих пор крайне привлекательно для получения структур высокого разрешения, требуется совершенствование методов кристаллизации. В данном проекте мы предлагаем оригинальный метод, нацеленный на преодоление ключевого ограничения in meso кристаллизации мембранных белков, сфокусированный на новом подходе к кристаллизации мембранных белков в синтетических мембраномиметических системах. Предлагаемый метод основывается на использовании de novo синтезированных полимерных добавок на основе полиэтиленгликоля, присутствие которых будет способствовать увеличению диаметров водных каналов липидных кубических фаз кристаллизационного матрикса и позволит получать кристаллы мембранных белковых комплексов с большой (> 50 Å) водорастворимой частью (например, рецепторов двухкомпонентных систем (гистидин-киназы, хемо- и фоторецепторы), АТФ-синтаз, GPCR, и др.). В настоящее время нет ни одного воспроизводимого подхода, который позволял бы получать кристаллы больших мембранных белков методом in meso. Предлагаемая нами методика на текущий момент не описана в литературе и составляет научную новизну проекта. Развитие подхода, позволяющего кристаллизовать большие мембранные белки, имеет существенное значение как для фундаментальной науки, так и для фармакологической отрасли, а также позволит создать весомое конкурентное преимущество на мировом уровне.
ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ
Аннотация результатов, полученных в 2024 году
1-2) Получен оптимальный на данный момент протокол синтеза и очистки пегилированных дикарбоновых кислот (FABPEG) по результатам сравнения четырёх протоколов. Показано, что наибольший выход реализуется в случае синтеза в одну стадию в диметилформамиде (ДМФА) в 10 кратном избытке диизопропилкарбодиимид (ДИК) и 1.1 кратном избытке N-ПЕГов и N-гидроксисукцинимида (NHS). Полученный протокол позволяет получать соединения, пригодные для получения липидных кубических фаз с расширенными водными каналами. Предметом дальнейшей оптимизизации остаётся проблема неполного разделения моно- и ди-ПЕГ-илированной карбоновой кислоты. На данный момент нами были синтезированы препараты FABPEG в достаточных количествах для проведения тестовых измерений с трёхкомпонентными системами и кристаллизационных экспериментов.
3) Методом малоуглового рассеяния было изучено влияние длины гидрофильной части полимера, способа синтеза и очистки FABPEG, порядка смешивания компонентов и способа гомогенизации смеси на параметры расширенных липидных мезофаз. Согласно полученным результатам, длина гидрофильной части существенным образом влияет на тип мезофазы и размеры водных каналов. При использовании FABPEG с молекулярным весом PEG в ~2500 и ~5000 Да достигаются расширенные ЛКФ с диаметрами водного канала до ~190 Å и ~240 Å, соответственно, однако для последнего диапазон условий устойчивости ЛКФ ограничен. Дальнейшее увеличение количества звеньев PEG не позволяет получить расширенные ЛКФ, а приводит к образованию либо расширенной ламеллярной фазы, либо нерасширенной кубической.
Результаты выполнения соответствующего пункта плана-графика на первый год выполнения проекта были представлены на Всероссийской конференции с международным участием «БИОХИМИЯ ЧЕЛОВЕКА», г. Москва, Россия, 17-19 октября 2024. Рижиков Ю.Л., приглашённый устный доклад: «МАЛОУГЛОВОЕ РАССЕЯНИЕ В ИССЛЕДОВАНИЯХ СТРУКТУРЫ МЕМБРАННЫХ БЕЛКОВ И МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕОБРАЗОВАНИЙ В ЛИПИДНЫХ СИСТЕМАХ ДЛЯ КРИСТАЛЛИЗАЦИИ». Ссылка на официальный сайт конференции: https://innovativedrugs.ru/berezov2024/. Ссылка на сборник тезисов (ISBN 978-5-906023-40-7): https://www.innovativedrugs.ru/berezov2024/биохимия-человека-тезисы-2024.pdf.
Было проведено сравнение измерений методом малоуглового рентгеновского рассеяния образцов в ПЦР-пробирках и в боросиликантых капиллярах. Продемонстрирован вклад в кривую рассеяния от ПЦР-пробирок, который не может быть корректно учтён при обработке данных, однако показано, что в случае измерений липидной кубической фазы он не препятствует корректной идентификации типа симметрии и параметров решётки.
Результаты этих методических экспериментов, проведённых с белковым препаратом ферритина из H. pylory, рекомбинантно экспрессированного в E. coli, обеспечили предварительные данные в исследовании стехиометрии гибридных глобул ферритина, внеся вклад в работу M.S. Gette, et. al, “Ferritin-based hybrid macromolecules experience unusual shift of stoichiometry distribution”, которая была подана в журнал International Journal of Biological Macromolecules.
4) Подготовлены генетические конструкции для экспрессии белков DesK, MscS, CusA, ClyA, AcrB, MsbA и YojI. Проведены эксперименты по тестовой экспрессии, приемлемые выходы белка получены для DesK, MscS, ClyA, MsbA и YojI. Отработаны протоколы очистки целевых белков DesK, MscS, ClyA, MsbA и YojI.
Для белка DesK предложен оптимизированный протокол экспрессии, позволяющий получить значительную долю белка в связанном с АТФ/АДФ состоянии.
Результаты исследования влияния условий экспрессии DesK на получение аденозиндифосфат-связанных состояний, полученные при выполнении пункта №5 плана-графика работ на первый год выполнения проекта, были представлены на международной конференции «Biomembranes'24», г. Долгопрудный, Россия, 7-11 октября 2024. Kuklina D.D., Ryzhykau Yu.L., постерный доклад: «Expression temperature influence on adenosine phosphate-bound state of recombinant BsDesK». Ссылка на официальный сайт конференции: https://biomembranes.events/. Ссылка на сборник тезисов: https://disk.yandex.ru/d/8zHHvPUJt9qZ0g.
По этим результатам был подготовлен манускрипт D.D. Kuklina, et. al., “Expression temperature influence on adenosine phosphate-bound state of recombinant BsDesK”, поданный в журнал Biochemistry (Moscow), Supplement Series A: Membrane and Cell Biology.
5) В экспериментах по коэкспресии белков NpSRII и NpHtrII был получен избыток белка трансдюсера - NpHtrII по отношению к сенсорному родопсину NpSRII. Выход NpHtrII составил ~2 мг с литра культуры. Так как именно этот белок в составе комплекса имеет большую водорастворимую часть (~30-35 нм), он является подходящей мишенью для дальнейших экспериментов по кристаллизации в мезофазах с расширенными водными каналами.
6) Был проведён сравнительный анализ распределений разрешения известных структур мембранных белков от таких параметров белка как его максимальный диаметр, размер гидрофильной части белка вдоль нормали к мембране и молекулярный вес, который показал, что ограничение по диаметру водного канала ЛКФ является “бутылочным горлышком” in meso кристаллизации.
Результаты этого сравнительного анализа были представлены на международной конференции «Biomembranes'24», г. Долгопрудный, Россия, 7-11 октября 2024. Zhuravlev S.A., Kazantsev A.S., Ivaschenko S.D., Kuklina D.D., Ryzhykau Y.L., постерный доклад: «Comparative analysis of high-resolution structures of membrane proteins». Ссылка на официальный сайт конференции: https://biomembranes.events/. Ссылка на сборник тезисов: https://disk.yandex.ru/d/8zHHvPUJt9qZ0g.
По этим результатам подготовлен манускрипт S.A. Zhuravlev, et.al., “Comparative analysis of high-resolution structures of membrane proteins”, поданный в журнал Biochemistry (Moscow), Supplement Series A: Membrane and Cell Biology.
Аннотация результатов, полученных в 2025 году
В 2025 году в рамках проекта, направленного на развитие методов ‘in meso’-кристаллизации крупных мембранных белков, получены следующие результаты:
1. Синтез FABPEG.
Оптимизирована двухстадийная очистка FABPEG-5k (гель-фильтрация + перекристаллизация), подобраны условия, позволяющие существенно снизить долю монопегилированной примеси.
2. Липидные мезофазы с детергентами и FABPEG.
С помощью малоуглового рентгеновского рассеяния построены карты фазовых состояний систем моноолеин-FABPEG-вода и моноолеин/монопальмитин-лаурилсаркозинат-вода.
Показано, что добавление FABPEG и ионогенных ПАВ позволяет получать расширенные кубические фазы с увеличенным диаметром водных каналов и управлять переходами между кубическими и ламеллярными фазами.
Обнаружены расширенные гексагональные фазы с очень широкими водными каналами (>200 Å), рассматриваемые как потенциальный новый тип матрицы для кристаллизации крупных мембранных белков.
3. Выбор и подготовка новых белков-мишеней.
Была пересмотрена стратегия подбора тестовых мишеней; в силу достаточности ранее отобранного набора α-спиральных мембранных белков, расширение списка за счёт MetNI, QFR, PBP1b признано нецелесообразным.
В качестве новой мишени выбран β-бочкообразный белок наружной мембраны E. coli CsgG с крупным периплазматическим доменом; сконструированы экспрессионные плазмиды на основе pET27_bmod, отработаны протоколы экспрессии и выделения белка.
4. CsgG: экспрессия и скрининг детергентов.
Подобраны условия экспрессии CsgG в штамме BL21(DE3).
Предложен многоступенчатый протокол «вычитающей» солюбилизации наружной мембраны (OPOE → LS → FOS-CHOLINE) для селективного извлечения CsgG при сильном снижении уровня фоновых белков.
5. Генно-инженерные конструкции NpHtrII.
Получены генно-инженерные конструкции полноразмерного NpHtrII и укроченных вариантов: HtrII(1–137) и HtrII(1–213).
6. Препаративная экспрессия и очистка модельных мембранных белков
Для BsDesK подтверждена воспроизводимость протоколов экспрессии, солюбилизации и очистки; получены препараты олигомеров, пригодных для кристаллизации.
Для HtrII(1-213) показано, что он преимущественно находится в растворимой фракции и в результате очистки не даёт гетерогенный препарат. Сделан вывод о непригодности NpHtrII как тестовой мембранной мишени.
Для MsbA отработаны условия экспрессии, солюбилизации в лаурилсаркозинате и Ni-аффинной очистки; получена в основном димерная форма белка.
Для YojI показано преимущество лаурилсаркозината по сравнению с DDM; получен гомогенный белок после металл-хелатной и гель-фильтрационной хроматографии.
Для ClyA получен гомогенный белок после металл-хелатной хроматографии.
Для MscS установлено, что протеолиз остаётся критической проблемой и препятствует дальнейшему масштабированию.
7. SAXS-исследования FABPEG и мембран с MsbA.
Предложена и реализована методика оценки степени дипегилирования FABPEG по интенсивности рассеяния в нулевой угол.
На комбинации солюбилизационных тестов и SAXS показано, что рекомбинантный MsbA при оверэкспрессии преимущественно локализуется во внешней мембране E. coli и вызывает измеримые изменения её толщины и структуры.
8. ‘In meso’-кристаллизация модельных белков.
Подготовлены и протестированы серии кристаллизационных матриксов на основе FABPEG-2k/5k/10k и кубических фаз моноолеина/монопальмитина для белков DesK, ClyA, MsbA и YojI, включая NMB подход для MsbA.
Получены кристалло-подобные образования для нескольких белков; проведены первичные дифракционные эксперименты (ESRF, SSRF), показавшие, что в протестированных условиях наблюдаемая дифракция обусловлена солью и липидами; намечены направления дальнейшей оптимизации.
9. Биоинформатический и структурный анализ мембранных белков.
Выполнен биоинформатический поиск гибридных родопсин–гистидин-киназ зелёных водорослей, классифицированы их доменные архитектуры, продемонстрирована перспективность этого класса белков для оптогенетики и кристаллизации в ЛКФ.
Проведён сравнительный анализ баз OPM и RCSB, показавший растущую доминирующую роль крио-ЭМ в структурной биологии эукариотических и человеческих мембранных белков.
Переработан алгоритм оценки гидрофильной толщины мембранных белков и заново посчитана статистика для структур, полученных методами ‘in meso’ и ‘in surfo’; новые распределения согласуются с физическими ограничениями по диаметру водных каналов липидных кубических фаз.
По результатам выполнения работ за 2024-2025 гг. в 2025 году были сделаны доклады на всероссийских и международных конференциях:
1) Рижиков Ю.Л. и др. II школа молодых ученых «Современные вызовы молекулярной биологии», г. Шерегеш, Россия, 30.03-04.04 2025 г. Приглашенный доклад “Структурный анализ мембранных белков: малоугловое рассеяние и кристаллизация”.
Сборник тезисов: https://disk.yandex.ru/i/Q5Yq0R5fR8EEIA
2) С. А. Журавлёв и др. 67-ая конф. МФТИ, г. Долгопрудный, Россия, 31.03-05.04 2025 г. Стендовый доклад “Сравнительный анализ распределения структур мембранных белков по гидрофобной толщине”.
Ссылка на сборник тезисов: https://old.mipt.ru/upload/medialibrary/f85/2_-lfi_2025.pdf
3) О. В. Семкин и др. 67-ая конф. МФТИ, г. Долгопрудный, Россия, 31.03-05.04 2025 г. Стендовый доклад “Определение локализации рекомбинантно экспрессированных мембранных белков в мембранах E. coli”.
Сборник тезисов: https://old.mipt.ru/upload/medialibrary/f85/2_-lfi_2025.pdf
4) А. Ю. Шишкин и др. 67-ая конф. МФТИ, г. Долгопрудный, Россия, 31.03-05.04 2025 г. Устный доклад “Исследование условий образования и диапазонов устойчивости расширенных липидных кубических фаз”.
Сборник тезисов: https://old.mipt.ru/upload/medialibrary/f85/2_-lfi_2025.pdf
5) Журавлёв С.А. и др. 5th RUSSIAN INTERNATIONAL CONFERENCE ON CRYO-ELECTRON MICROSCOPY 2025, г. Москва, Россия, 8-11.06.2025 г. Стендовый доклад "CRYO-ELECTRON MICROSCOPY OF MEMBRANE PROTEINS: QUANTITY CHAMPION, QUALITY CHALLENGER?"
Сборник тезисов: https://www.bioeng.ru/riccem/wp-content/uploads/sites/2/2025/11/tezisy-riccem-2025.pdf
6) Шишкин А. Ю. и др. 29th International Scientific Conference of Young Scientists and Specialists (AYSS-2025), г. Дубна, Россия, 27-31.10.2025. Стендовый доклад “Possibilities of obtaining swollen lipid cubic phases using various ionogenic surfactants.”
Ссылка на тезисы: https://indico.jinr.ru/event/5517/contributions/33374/
7) Безручко И. О. и др. AYSS-2025, г. Дубна, Россия, 27-31.10. 2025. Стендовый доклад Effective production of E. coli ABC-transporter MsbA for in meso crystallization improvement.
Ссылка на тезисы: https://indico.jinr.ru/event/5517/contributions/33375/
8) Журавлёв С.А. и др. AYSS-2025, г. Дубна, Россия, 27-31.10.2025 г. Стендовый доклад "Improved Analysis of the Hydrophilic Dimensions of Membrane Proteins from X-ray Crystallographic Data "
Ссылка на тезисы: https://indico.jinr.ru/event/5517/contributions/33373/
Публикации
1.
Куклина Д.Д., Муругова Т.Н., Рулёв М.И., Рижиков Ю.Л.
Influence of Expression Temperature on the Adenosine Phosphate Bound State of Recombinant BsDesK
Biochemistry (Moscow) Supplement Series A: Membrane and Cell Biology, Volume 19, pages 66–72 (год публикации - 2025)
10.1134/S1990747824700478
2.
Журавлёв С.А., Казанцев А.С., Иващенко С.Д., Куклина Д.Д., Рижиков Ю.Л.
Comparative Analysis of High-Resolution Structures of Membrane Proteins
Biochemistry (Moscow) Supplement Series A: Membrane and Cell Biology, Vol. 19, No. 1, pp. 145–149 (год публикации - 2025)
10.1134/S1990747824700594
3.
Лаптенкова Е.В., Зиновьев Е.В., Горделий В.И.
Receptor Histidine Kinases in Green Algae: Domain Analysis
Biochemistry (Moscow) Supplement Series A: Membrane and Cell Biology, Vol. 19, No. 4, pp. 440–448 (год публикации - 2025)
10.1134/S1990747825700424